包涵体的纯化

包涵体是外源基因在原核细胞中表达时，尤其在大肠杆菌中高效表达时，形成的由膜包裹的高密度、不溶性蛋白质颗粒，在显微镜下观察时为高折射区，与胞质中其他成分有明显区别。包涵体形成是比较复杂的，与胞质内蛋白质生成速率有关，新生成的多肽浓度较高，无充足的时间进行折叠，从而形成非结晶、无定形的蛋白质的聚集体；此外，包涵体的形成还被认为与宿主菌的培养条件，如培养基成分、温度、pH值、离子强度等因素有关。

细胞中的生物学活性蛋白质常以可融性或分子复合物的形式存在，功能性的蛋白质总是折叠成特定的三维结构型。包涵体内的蛋白是非折叠状态的聚集体，不具有生物学活性，因此要获得具有生物学活性的蛋白质必须将包涵体溶解，释放出其中的蛋白质，并进行蛋白质的复性。包涵体的主要成分就是表达产物，其可占据集体蛋白的40%~95%,此外，还含有宿主菌的外膜蛋白、RNA聚合酶、RNA、DNA、脂类及糖类物质，所以分离包涵体后，还要采用适当的方法（如色谱法）进行重组蛋白质的纯化。

（一）试剂配制

1、缓冲液A：50mM Tris-HCl（pH8.0），2mM EDTA，100mM NaCl。

2、缓冲液B：50mM Tris-HCl（pH8.0），1mM EDTA，100 mM NaCl，1%NP-40。

3、缓冲液Ⅰ：50mM Tris-HCl （pH8.0），2mM EDTA，100 mM NaCl，0.5%Triton X-100（V/V），4M脲素。

4、缓冲液Ⅱ：50M Tris-HCl（pH8.0），2mM EDTA，100 mM NaCl，3% Triton X-100 。

5、缓冲液Ⅲ：50mM Tris-HCl（pH8.0），2mM EDTA，100 mM NaCl，0.5%Triton X-100，2M 盐酸胍。

6、缓冲液C：8M脲素，10mMβ-巯基乙醇，100 mM Tris-HCl（pH8.0），2mM EDTA及脱氧胆酸钠。

（二）操作步骤

1. 用缓冲液A漂洗菌体细胞（10ml/g）， 离心6000g×15min,收集菌体细胞，重复此步骤，将菌体细胞再在缓冲液A中洗涤一次。

2. 将漂洗过的菌体细胞悬浮于缓冲液B中，超声破碎，镜检，破碎率高于95%，离心1500g×30min,收集包涵体沉淀。

3. 将包涵体沉淀用缓冲液Ⅰ、缓冲液Ⅱ、缓冲液Ⅲ分别超声洗涤一次，1500g 离心收集包涵体沉淀。

4. 包涵体的溶解：用含高浓度脲素的缓冲液室温放置30min，然后离心1500g×30min，留上清。将溶解后的蛋白质适当稀释，磁力搅拌，透析过夜。

5. 溶解后的包涵体蛋白可通过亲和层析进一步纯化。