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脂肪干细胞的制备

相关实验:动物成体干细胞制备技术

别名:ASCs

最新修订时间:

简介

ASCs 是一种脂肪组织来源的间充质干细胞,具有干细胞的共性,即自我更新及多向分化的能力,可取自自体,遗传背景稳定,可在体外培养、扩增及诱导。原代 ASCs 经过 2~4 天的潜伏期后,迅速集落性扩增,细胞与 MSCs 类似呈均一的梭形的成纤维状形态,倍增时间为 33~38 小时。基因和超微结构表明 ASCs 也具有强大的分化可逆性。

材料与仪器

器材:

① 2 把尖解剖剪:长 10 cm,两个 Perry 镊:长 12.5 cm;注射器

② 200 目筛网
③ 100 mm 培养皿、15 ml 离心管
④ 离心机、培养箱
⑤ 7 号针头、4 号半针头

试剂:

① 材料:6~8 周龄雄性 Sprague-awley 大鼠

② ASC medium:82% α-MEM + 15% FBS + 1% NEAA + 1% L-Glutamine + 1% Streptomycine-Penicillin + 4 ng/ml BFGF

③ PBS(1000 ml):0.57 g Na, HPO4 + 8 g NaCl + 0.25 g KCl + 0.25 g KH2PO2

④ 0.1% I 型胶原酶

步骤

脂肪干细胞的制备的基本过程可分为如下几步:


1. 采取颈椎脱日法处死小鼠,将鼠体浸泡于 750 ml/L 乙醇中 3~5 分钟。


2. 尽量在无菌条件下切除附睾脂肪垫。

① 用一把解剖剪剪开腹部皮肤,暴露腹膜;

② 用另一把解剖剪剖开腹膜,然后用 Perry 镊向上牵拉睾丸;

③ 剪取附睾脂肪垫,注意保留血管。

3. 将组织移入超净工作台中 35 mm 培养皿中,再取一套原代器械包置于超净工作台中。


4. 取 3 个 35 mm 培养皿,每个加入 3 ml 含 2% SP 的 PBS,清洗脂肪组织 3 遍,直到表面干净无血色,置于新培养皿中。


5. 将 4 g 脂肪组织用解剖剪反复剪碎成大约 1 mm3 细小组织块,加入少量 0. 1% I 型胶原酶移入 15 ml 离心管。


6. 将胶原酶溶液补至 2 ml,37 ℃ 恒温摇床振荡消化 30 分钟。


7. 反复振荡吹打,直至细胞混合物形成乳脂样浓稠液体,加入 4 ml ASC medium。


8. 200 目筛网过滤,移入一个新的 15 ml 离心管中,1000 r/min 离心 8 分钟,沉降细胞。


9. 使用真空吸液器吸去上清液及悬浮脂肪组织。


10. 加入培养液重悬细胞并调整细胞密度。


11. 以合适的密度接种于培养瓶中,标记为原代细胞(P。)。


12. 置 37 ℃、5% CO2、饱和湿度的培养箱中静置培养。


13. 于 24 小时后首次更换培养液,去除未黏附细胞,以后每 3 天更换 1 次培养液。


14. 待细胞长至 80%~90% 融合时传代。

来源:丁香实验

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