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流 感 病 毒

相关实验:染性疾病动物模型

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

基 本 方 案 1 流感病毒鼻腔内感染麻醉的小鼠

这种方法可以建立所有呼吸道感染(鼻 、气管、肺)。

材料

6〜8 周 龄 小 鼠(如 B A L B /c)

I X l O 2〜I X l O 5 T CID5()/m l 流 感 病 毒(见辅助方案 2 和 4 滴定)

1 . 安全固定 6〜8 周 龄 小 鼠(附 录 2 0 , 氯胺酮/赛 拉 嗪 麻 醉(附 录 2D )。

如 果 实 验 需 要 定 量 测 定 肺 脏 病 毒 滴 度 ,应 避 免 使 用 吸 入 麻 醉 剂 , 因 为 它 们 对 纤毛 的 抑 制 作 用 影 响 病 毒 的 清 除 。

2 . 捏住麻醉小鼠的背部使其头部向后倾斜,鼻 腔 向 上(目的是暴露鼻腔,使病毒更稳定地进入呼吸道)。应用移液管每侧鼻孔滴入 IOul I X I O 2〜IX I O 5T C I D 50/m l 流感病
毒 。保持小鼠此体位 15s,使病毒进入肺内。

3 . 将小鼠腹部置于温暖的地方使其恢复。

流 感 病 毒 可 在 同 一 笼 内 鼠 与 鼠 间 传 播 。 一 般 同 一 实 验 组 的 小 鼠 可 在 同 一 笼 内 饲养 。应 用 这 种 方 法 使 小 鼠 互 相 感 染 , 同 时 增 强 了 病 毒 的 毒 力(见 基 本 方 案 2 ) 。

4 . 保存一份病毒样本以确定其滴度(见辅助方案 2)。

备 选 方 案 流 感 病 毒 鼻 腔 内 感 染 未 麻 醉 小 鼠

用这种方法,最初的感染仅限于上呼吸道,病毒将于 3〜5d 内播散到气管及肺。

材 料 见 基 础 方 案 1

1 . 安全抓取和控制 6〜8 周 龄 小 鼠(附 录 2D ) ,防止其干扰操作。

2 . 捏住小鼠的背项部使其头部向后倾斜,鼻 腔 向 上(目的是暴露鼻腔,使病毒更稳定地进入鼻内)。应用移液管缓慢向两侧鼻孔滴入 I X IO2〜I X IO5T C I D 50/m l 流感病毒
1 〇 ul, 使小鼠能将病毒充分地吸入到鼻腔内,然后再感染下一只小鼠。

在 进 行 鼻 腔 内 感 染 时 两 人 合 作 明 显 比 一 人 有 效 ,一 人 抓 取 并 固 定 小 鼠 , 另一 人操 控 病 原 滴 注 。

辅 助 方 案 1 流感病毒在鸡胚中扩增

材料

9〜lld、无特异性致病原感染的鸡胚(SPA F A S 或 H y -Vac)

5000U /5 mg/ml (分别)青/链霉素溶液

I X IO3T C I D 50/ m l 流感病毒原液

7 0% (V A O 乙醇 透 光 盒 (Stromberg’Chick and Game Bird) 7 0 % 酒精棉球 鸡 蛋 打 孔 器 (Stromberg’Chick and Game Bird) 配 有 25G , 5/8 in针头注射器 黏附带 鸡蛋托盘 34〜35°C 孵化器,湿度 为 8 2 % 无菌尖剪刀 无菌金属刮勺 5 in巴斯德移液管,无菌带球囊 50m l 无菌圆锥管 冷 冻 D P R -6000离心机及253旋转子 0. 滤 器 (可选) Im l 冷冻管 1 . 将 9〜lld、无病原鸡胚放于透光盒前,根据存在健康的管道及可自由晃动的胚胎选 择完整可靠鸡胚。剔除那些管道看起来干枯、模糊或胚胎固定的鸡胚。 气 嚢 位 于 鸡 蛋 较 大 的 一 端 ,看 起 来 像 一 开 放 、干 净 的 空 腔 , 由 一 层 黑 膜 将 其 与 尿 嚢 分 隔 ,透 过 空 腔 可 见 到 尿 嚢 内 液 。 2 . 观察每个鸡胚气囊的位置。在 鸡 蛋 外 面 画 一 条 线 (在胚胎对面一侧的鸡蛋上)显示 气囊与尿囊的边缘。 3 . 用 7 0 % 酒精棉消毒标记线周围区域,用鸡蛋打孔器在气囊和尿囊分界线上向气囊内 穿一孔。 7 0 % 酒精棉消毒孔周围区域。 4 . 用 I ml注 射器抽取 5000U /5m g /m l 青/链霉素溶液。持住注射器,尽 可 能 将 25G 针 头经过穿刺孔垂直插入尿囊,注 入 〇. I m l 液体后移走注射器。 5 . 用相同的方法将undefined2m l 的 I X l O 3 T C I D 5Q/ m l 流感病毒原液经原穿刺孔注入尿囊内, 7 0 % 酒精棉擦拭鸡蛋并用7 0 % 酒精棉覆盖穿刺孔。对每一个需要处理的鸡蛋均重复 步 骤 4 和 5。 6 . 将鸡蛋较大一端向上,固定于34〜35°C 湿 度 为 8 2 % 孵化器内,孵 化 3d 。 7 . 鸡 蛋 孵 化 72h 后 , 4°C 冷却过夜,或 一20°C 冷 却 过 20〜30m i n 以杀死胚胎凝固血液 (不要冻结鸡蛋),储 存 于 4〜8°C 以备试验。 8 . 移走酒精棉,用 7 0 % 乙醇将整个鸡蛋消毒。用无菌剪刀从穿刺孔开始在蛋壳上面剪 开 2〜3c m 环 ,在气囊上暴露尿囊膜。 9 . 用无菌金属刮勺,拨幵一部分尿囊膜使其紧贴于蛋壳,将带球囊的无菌5 f i n 巴斯 德移液管尖端从蛋壳与刮勺间插入尿囊内,吸 取 尿 囊 内 液 (3〜l〇ml),移入置于冰 上 的 50m l 无菌圆锥管内。 10. 4°C , 500g 离心尿囊液lOmin。收集上清置于冰上无菌玻璃管内,如果所吸取的尿
囊液并非无菌,可将收集的上清液用〇 .45Mm 滤器过滤。 4°C 储存几周或将一部分 移 入 I m l 冷冻管内一70°C 储藏几年。 每次生产较多量病毒液以确保每批实验用的病毒稳定一致,每个冷冻/融化循 环将降低0 •5〜1 个对数级的滴度。 11.通 过 滴 定 确 定 血 凝 素 单 位 (H A U ; 见 辅 助 方 案 9 ) 和 5 0 % 培 养 组 织 感 染 剂 量 (T C I D 5。;见辅助方案4) 辅 助 方 案 2 鸡胚尿囊液内流感病毒滴度的测定 材料 5 % (W T ) FBS 的 D M E M (D M E M -5, Clonetics) 含 50/xg/ml 庆 大 霉 素 , lOOU/ml青霉素, 100]Lig/ml链霉素和2. 5]Lig/ml两性霉素 待 检 液 (如组织匀浆,尿囊液;见辅助方案1) 2.5X 105 M D C K 细 胞 (A T C C # C C L -34;见辅助方案 3) 0.0002% (m A O 胰 蛋 白 酶 /D M E M 含 50Mg/m l 庆 大 霉 素 , 100U /m l 青 霉 素 , 100Mg/m l 链霉素和2. 5Mg/m l 两性霉素 新鲜配制含0.5% (V /V ) 鸡红细胞无菌P B S 悬 液 (见辅助方案7 ,步 骤 1〜3) 已 知 滴 度 流 感 病 毒 (如 A /PortChalmers/73, A T C C # V R -810; A /P R /8/34, A T C C # V R -95) 9 6 孔圆底组织培养用平板,带盖、无菌 多通道移液器 35°C , 5 % C 0 2培养箱 组 织 匀 裝 器 (Fisher Scientific) 1•对每个待测样品, 9 6 孔组织培养板A 〜G 行 相 邻 3 列每孔加90M1D M E M -5。 H 行每 孔 加 IOOmI (阴性对照)。每个平板上包含3 列阳性对照。 2•对样品, A 行 3 个 孔 ,每 孔 加 IOm I 组织勻浆。多通道移液器混合8〜1 0 次 ,然后从 每孔转移IOfd至 B 行相应的孔内,再次混合,换掉移液器枪头后,再次转移相同剂 量 直 至 G 行 。 G 行每孔移走并丢弃10M1。对于阳性对照,加入病毒原液稀释液。 3 . 加 100/xl2.5X 105 M D C K 细 胞 至微滴定板所有孔内。盖 上 盖 子 ,置 于 湿 化 35°C , 5%〇 }2培养箱内过夜。 4 . 用多通道移液器吸走培养液。为避免更换移液器枪头,从 阴 性 对 照 (H 行)开始随 浓度增加直至A 行 ,保持移液器枪头成一直线,使它们可用于处理同一样本。 5•加 200iu l D M E M /0•0002%(m /V ) 胰 蛋 白 酶 (含抗生素)至微量板所有孔内。置于 35°C , 5 % C 0 2培养箱内培养4d 。 6 . 加 50M1 P B S 配制的鸡红细胞悬液至所有孔内。 4°C孵 育 lh,识别并记录每个样品的 凝 集 样 式 (含有病毒的孔内红细胞凝集并呈现混浊状,不含病毒的孔内红细胞沉 淀于孔底)。根 据 公 式 (见 辅 助 方 案 4 ) 计 算 每 个 样 品 5 0 % 培 养 组 织 感 染 剂 量 (Tcro50) o
辅 助 方 案 3 MDCK细胞的长期培养 材 料 (带V 项 目 见 附 录 1) M D C K 细 胞 (A T C C # C C L -34) V 不 含 Ca2' M g 2+ 的 H B S S ,含或不含0.25 % 胰蛋白酶及0.03 % E D T A 含 5 % 及 1 0 % (V A O 胎 牛 血 清 的 D M E M (D M E M -5, D M E M -10) 同时含有 SOiUgAnl庆 大 霉 素 , l O O U / m l 青 霉 素 , IOOiUgAnl链 霉 素 和 2.5iug/ml两性 霉素 75cm2组织培养瓶 37°C , 5 % C 0 2培养箱 50m l 圆锥管,无菌 1. M D C K 细胞加人含抗生素D M E M - I O 的 75c m 2组织培养瓶中,培养至细胞互相汇合。 2. 倾倒培养液并用IOml H B S S 洗涤培养瓶两次。力 n 5m l 含 0 •2 5 % 胰 蛋 白 酶 及 0 •0 3 % E D T A 的 H B S S 0 37°C I浮 育 15〜 20m i n 或 直 至 细 胞 解 离 。力口I O m l 含 抗 生 素 的 D M E M - I O 并用移液管吹散细胞团。 3. 转 移 2〜4m l 细胞悬液至一新75c m 2培养瓶,其中含有16〜18m l 含抗生素的D M E M - 5 。将培养瓶放入37°C , 5 % 0 0 2培养箱。 2〜4d 后或细胞长满时再次传代细胞。 4. 可选:将剩余的细胞转移至一无菌50m l 离心管并于200g 离 心 5min。弃上清后将细 胞重悬于IOml含抗生素的D M E M - 5 中,用 台 盼 蓝 染 色 (附 录 3 ) 计数活细胞同时 将细胞浓度调整至2. 5X 105个细胞/m l ,用 于 病 毒 滴 定 (见 辅 助 方 案 4 ) 或中和分析 (见辅助方案10)。 辅 助 方 案 4 培 养 组 织 流 感 病 毒 感 染 剂 量 (TCID5 0 ) 的测定 材 料 见 辅 助 方 案 2 1. 按辅助方案2 方法滴定病毒,但稀释开始时用l〇Ml病毒原液作为检测样品,另在滴 定板中选3〜5 列作为稀释列。设一列培养基对照、一 列 细 胞 对 照 (阴性对照)。 2. 在 第 5 天读取凝集滴度之前,准 备 一 张 类 似 表 11. 6 . 1 的表格, A 列 表 示 “病毒稀 释”的对数。读取滴度之后,填入每种病毒稀释倍数 下 凝 集 孔 与 非 凝 集 孔 数 量 (B 列 和 C 列)。 3. 确定每一稀释倍数下所有凝集孔的数量(D 列),即 从 最 低 稀 释 倍 数 (1CT8) 到给定 稀释倍数下所有凝集孔的数量之和。确定每 一 稀 释 倍 数 下 所 有 非 凝 集 孔 的 数 量 (E 列),即从最高稀释倍数(K T 1) 到给定稀释倍数下所有非凝集孔的数量之和。 4. 计算每种稀释倍数下所有凝集孔占总孔数的比例(F 列),可通过将所有凝集孔数除 以凝集孔数与非凝集孔数之和获得。将这种比例换成每种稀释倍数下的百分比数值 (G 列)。 5. 确 定 T C I D 5q所 处 的 稀 释 度 范 围 ,即 此 种 稀 释 度 范 围 内 所 有 凝 集 孔 百 分 比 为 50% (表 11. 6. 1为 10—6〜10—7)。
表 1 1 . 6 . 1 计 算 TCIDS。样表 A B C D E F G 病毒稀释度 凝集孔 非凝集孔 累积的凝集孔 (B 列总和) 累积的非凝集孔 (C 列总和) 累积的凝集率 BD/CD+E) 凝集孔累积 10- 1 5 0 31 0 31/31 100% 10-2 5 0 26 0 26/26 100% 10-3 5 0 21 0 21/21 100% 10-4 5 0 16 0 16/16 100% 10-5 5 0 11 0 11/11 100% 10-6 4 1 6 1 6/7 86% 10-7 2 3 2 4 2/6 33% 10—8 0 5 0 9 0/9 0% 6•为确定 T C I D 5q先计算离散比 P D (proportion distance) : P D — _____ (% above T C I D 50) — 5 0 % _______ (% above T C I D 50) — (% below T C I D 50) 从 表 11. 6. I 中数据可得: 8 6 % - 5 0 % 8 6 % - 3 3 % = 0• 68 7 . 根据公式计算T C I D 5。对数值: (高 于 T C I D 5。稀释倍数的对数值) + ( P D X 稀释因子) = T C I D 5q对数值 本 例 3 个数值分别为一6、 0.68和一1: (—6) + [0•68 X (— 1. 0)] = —6. 68 稀释终点即为1C T6’68。这个数值的倒数表示感染单位体积的病毒效价。由于接种体 积 为 10W ,所以病毒效价可表示为106’68 T C I D 5J O .O l m l 或 W T C I D 5Q/m l 。 辅助方案5 小 鼠 5 0 % 致 死 剂 量 (M L D 5O) 和小鼠5 0 % 感 染 剂 量 (M I D so) 的测定 小 鼠 可 在 清 醒 (见 备 选 方 案 )及 麻 醉 (见 基 本 方 案 1 ) 状 态 下 进 行 鼻 内 接 种 。 M L D 5O和 M I D 5。的数值与小鼠的品系、鼠龄及感染前是否麻醉有关。 材 料 (带V 项 目 见 附 录 1) 滴定用流感病毒原液(见辅助方案4) 小 鼠 (如 B A L B /c, 6〜8 周龄) 无 菌 P B S 配 制 的 10m g /0. 4m g / m l 氯胺酮/赛啦曝麻醉液 V P B S , 无菌 1 . 确定分析T C I D 5。所用流感 病 毒 滴 度 (见辅助方案2 或 4) 2 . 用无 菌 P B S 配 制 的 10m g /0. 4m g /m l 氯胺酮/赛啦嗪麻醉液麻醉小鼠,每 组 4 只 ,用 P B S 稀释的含有0 (仅 为 P B S ,阴性对照)、 1、 IO1、 IO2、 IO3、 IO4和 IO5 TCI D 50的
感病毒,各 取 20/xl进行鼻内感染。 3 . 感染 后 2 周 ,从小鼠尾静脉取血(附录2F )。采用红细胞凝集抑制分析(H A I ) 确定 血清中存在抗流感病毒抗体(见辅助方案8)。用 H A I 数据计算M I D 50。 4 . 为计 算 M LD5。准备一张类似表11. 6. 2 的表格。 A 列填入接种病毒的TCID5。剂 量 , B 列 和 C 列分别填人每种剂量下死亡及存活小鼠的数量。 表 11. 6. 2 计 算 M L D S()样 表 A B C D E F G 剂量(TCID50) 死亡 存活 累积死亡 (B 列总和) 累积存活 (C 列总和) 累积死亡率 (D /D +E ) 累积死亡 IO5 4 0 15 0 15/15 100% IO4 4 0 11 0 11/11 100% IO3 3 1 7 1 7/8 88% IO2 3 1 4 2 4/6 67% IO1 1 3 1 5 1/6 17% 10° 0 4 0 9 0/9 0% nil 0 4 0 13 0/13 0% 5 . 确定每种病毒剂量下所有死亡小鼠的数量(D 列),通过累加最低剂量至给定剂量各 组死亡小鼠之和可得。确定每种病毒剂量下所有存活小鼠的数量(E 列),通过累加 最高剂量至给定剂量各组存活小鼠之和可得。 6 . 计算每种剂量下的累计死亡率(F 列),即每种剂量下所有死亡小鼠除以所有死亡及 存活小鼠之和,并将此数值换算为死亡率百分数(G 列)。 7 . 确 定 M LD5。所 处 稀 释 区 间 ,此 区 间 内 累 计 死 亡 率 百 分 数 应 为 5 0 % ( 表 11. 6. 2 为 IO2〜101)。 8 . 为确定 M LD5O, 首先确定离散比 PD (proportion distance): P D — __________ 5 0 % — (% mortality below M LD50)___________ ( % mortality above M LD50) ~ ( % mortality below M LD50) 对 于 表 11. 6. 2 数据: 5 0 % - 1 7 % 6 7 % — 1 7 % = 0 •66 9 . 根据下面公式计算M LDS。: (低于M LD5。 的 TCID5。 的 lo g 对数) + (PD X 稀释因子) = MLD5。 的 lo g 对数 本例三个数值分别为: 1.0、 0.66和 1 L 0 + (0. 66 X I ) = 1. 66 此病毒原液的M L D 5。为 IO166 T C I D 50。 当我们检测某一特殊治疗能否降低小鼠的死亡率,我们可以令小鼠感染5〜10 倍 M L D 5。的 剂 量 (本 例 为 IO2〜10“ 6 T C I D 50)。 10.为计 算 M I D 5。准备一类似表11. 6. 3 表格。 A 列填入接种病毒的TCID5。剂 量 , B 列
和 C 列分别填入每种剂量下感染(死亡或抗体阳性)及非感染小鼠的数量。 表 11. 6 . 3 计 算 M I D s。例表 A B C D E F G 剂量(T C I D 50) 感染 未感染 累计感染 累计未感染 累计感染率 累计感染 IO5 4 0 21 0 21/21 100% IO4 4 0 17 0 17/17 100% IO3 4 0 13 0 13/13 100% IO2 4 0 9 0 9/9 100¾ IO1 4 0 5 0 5/5 100% 10° 1 3 1 3 1/4 25% nil 0 4 0 7 0/7 0% 11. 确定每种病毒剂量下所有感染小鼠的数量(D 列),通 过 累 加 O T C I D 5。剂量至给定 剂量各组感染小鼠之和可得。确定每种病毒剂量下所有非感染小鼠的数量(E 列), 通过累 加 IO5 T C I D 5。剂量至给定剂量各组非感染小鼠之和可得。 12.计算每种剂量下的累计感染率(F 列),即每种剂量下所有感染小鼠数量(D ) 除以 所 有 感 染 及 非 感 染 小 鼠 数 量 之 和 (D + E ),并 将 此 数 值 换 算 为 死 亡 率 百 分 数 (G 列)。 13. 确 定 M I D 5。所处稀释区间,此 区间内累计感染率百分数应为5 0 % ( 表 IL 6. 3 为 IO1- I C O 0 M . 为 确 定 M I D 5 q , 首先确定离散比P D : P D — _________ 5 0 % — (% infected below M L D 50)__________ (% infected above M L D 50) — ( % infected below M L D 50) 对 于 表 11. 6. 3 数据: 50^ - 25¾ 100% - 2 5 % = 0 •33 15.根据下面公式计算M I D 50: (低于M I D 5。的 T C I D 5 q 的 log对数) + (PD X 稀释因子) = M I D 5。的 log对数 本例三个数值分别为:〇 .〇、 0.33和 1 0.0 + (〇. 33 X 1) = 0. 33 此病毒原液的M I D 5 q为10°’33 T C I D 50。 辅 助 方 案 6 检测流感病毒滴度的小鼠肺脏制备 材 料 (带V 项 目 见 附 录 1) 8 周龄流感病毒感染B A L B /c 小 鼠 (见基本方案1) V 冷的无菌PBS 70 % (V A O 乙醇 16m m X 125m m 聚丙烯无菌圆底螺旋盖试管
电动搅拌器 台式离心机 Iml无菌圆锥管 1. IO5T C I D 5 q (>100M I D 5。)流感病毒感染8 周龄小鼠。 2 . 感染后适当时间采用氯胺酮/赛啦嗪麻醉液麻醉小鼠,无菌取肺并置于含2m l无菌预 冷 P B S 的 16mmX 125m m 聚丙烯无菌圆底螺旋盖试管内。 如 需 进 行 组 织 学 检 查 , 切 取 一 叶 肺 脏 注 入 福 尔 马 林 使 之 膨 胀 , 并 置 于 福 尔 马 林 中 。 3 . 用无菌搅拌器,冰上匀浆肺组织。匀浆不同样本时采用P B S 及 7 0 % 乙醇清洗研杵。 煤气灯上迅速烧烤一下研杵,然后用预冷的P B S 冲洗。 4 . 台式离心机上离心肺组织匀浆5°C , 200g 离 心 lmin。将每个样品的上清等分至2 个 Iml无菌离心管内,储存于一70°C^ 辅 助 方 案 7 流感病毒储存液中血凝单位的测定 材 料 (带7 项 目 见 附 录 1) 鸡 血 与 Alsever液 (附 录 I) I : 1 混 合 液 或 其 他 抗 凝 或 商 业 化 鸡 红 细 胞 (如 Clonetics) V 无 菌 I3BS PBS/0.5% (m /V ) B S A 溶液 尿囊液内的流感病毒储存液(见辅助方案1) 15ml及 50m l无菌离心管 96孔圆底微滴定板 多通道移液器 1 . 取 3m l 鸡 血 与 Alsever液 I : 1 混 合 液 于 15m l 无菌离心管内^ 4°C 存 放 30d 。如应用 商业化鸡红细胞则从步骤4 开始。 2 . 管 内 加 IOml无 菌 I^B S ,慢慢颠倒数次混合内容物。 200g 离 心 5min。去除上清及白 细胞层。重 复 2 次 。 3 . 第 3 次去除上清后,准 备 1 % 鸡红细胞溶液,即 于 50m l 离心管内加0.4m l 鸡红细胞 至 39. 6m l 无 菌 P B S 内并颠倒数次混匀。当天应用。 4•于9 6 孔圆底板中取相邻3 列 ,每孔均加入50M1 0 . 5 % B S A 的 P B S 。 5 . 用 P B S 按 I : 1 0 稀释流感病毒原液。第 1 、 2 列 A 行每孔加入50W 病毒稀释液并用 多通道移液器混合8〜1 0 次 (1 : 2 0 稀释)。更换移液器枪头, A 行 每 孔 取 50^1溶液 至 B 行同时混合8〜1 0 次 。持 续 进 行 2 倍 稀 释 ,即每次向下一行孔内转移50^1溶 液 ,每次均应更换枪头并混匀。最后一行混勻后丢弃多余的50M1溶液。 6 . 每 孔 加 50M1 0 . 5 % B S A P B S 溶 液 和 5 ( ^ 1 1 % 鸡 红 细 胞 (步 骤 3)。常温下放置平板 30m i n 以使红细胞沉降。 7 . 轻轻倾斜、静置微滴定板几分钟后开始读取每孔的凝集模式。确定使红细胞完全凝 集的病毒最大稀释度即为终点。
当微滴定板倾斜时,对照孔内红细胞会形成特征性的泪珠状(没有流感病毒所 以没有凝集h 病毒量最大的孔形成混浊状,因为病毒交叉连接了所有的红细胞,阻 止了它们沉淀。无沉淀但病毒量相对少的孔形成了部分凝集,所以沉淀并未形成泪 珠状。 8•上述终点的倒数即为血凝反应单位(H A U ) 数 值 (如最终稀释度为1 : 6 4 0 , 滴度即 为 640H A U /5M1样品)。取多个终点的平均数作为样品的血凝滴度。如果多个重复组 的差异高于1〜2 倍稀释度,须重复滴定。 辅 助 方 案 8 小 鼠 血 清 的 血 凝 抑 制 试 验 (H AI) 材 料 血清取自流感病毒感染小鼠 1 % 鸡 红 细 胞 (C R B C ) P B S 悬 液 (见辅助方案7 , 步 骤 1〜3) PBS (附录 I) /0.5% (m /V ) B S A 溶液 病 毒 抗 原 (见辅助方案7) 56°C 水浴箱 9 6 孔非无菌、非组织培养用圆底微滴定板 多通道移液器 1 . 每 个 0.5m l 离心管内加入50M1流感病毒感染小鼠血清(包括阳性及阴性对照血清)。 56°C 水浴箱孵育30m i n 灭活补体。 2 . 每 个 离 心 管 内 加 入 200W 的 1 % C R B C 消 除 血 清 非 特 异 性 凝 集 活 性 。常温孵育 30min,每 IOmin 颠倒 1 次。 3 . 孵育过程中, 96孔 板 B 〜G 行每孔加50M1P B S 。 H 行每孔加IOOiUl (C R B C 对照孔)。 4. 14 OOOr/min离 心 5s 使 C R B C 沉淀。将血清移至新离心管内。同样两列A 行 和 B 行 相邻孔内加50M1热灭活、已吸附的血清样品。用多通道移液器混合B 行孔内血清和 稀 释 剂 8〜10 次 。吸 取 50/xl B 行 溶 液 至C 行相邻两孔内,继 续 2 倍 稀 释 直 至G 行 。 混 合 G 行每孔内样品后,移走并丢弃50jul样 品 (使 A〜 G 行每孔含有等体积样品)。 如果血清稀释度需要> 1 : 640,可将一系列的稀释延长至微滴定板的其他列 (第 1〜1 1 列),可用第1 2 列 作 C R B C 对照。 5 . 稀释流感病毒抗原直至每50/xl含 有 4H A U (见辅助方案7)。 作为对照,流感病毒抗原应重新滴定以确定含有4H A U 。 6. B 〜G 行每孔加50/xlPBS, H 行每孔加100M1。 A 〜B 行每孔加50/xl病毒抗原。混合 B 行每孔的样品,然后转移5〇 W 至 C 行相邻的孔。混合后 持 续 按 1 : 2 稀 释 直 至 G 行 。不要处理H 行 ,此为阴性对照。 7 . 除 H 行 外 (C R B C 对 照 孔 ),微 滴 定 板 每 孔 加 5(^1病 毒 抗 原 稀 释 液 。室温孵 育 30mino 8•所有孔内加50;xl的 1 % 鸡红细胞。室 温 孵 育 30〜45min。 轻轻斜置微滴定板数分钟 后读取凝集模式,并将样品与对照孔比较。加 入 C R B C I h 内读取所有板孔,此时 C R B C 与流感病毒反应是可逆的
阴 性 对 照 孔 (不含抗流感病毒抗体的正常小鼠血清)会 出现 混 浊 ,因为流感病 毒 使 C R B C 完全凝集。阳 性 对 照 孔 (含有已知抗流感病毒血清) 出 现 C R B C 沉淀类 似 于 H 行沉淀,因为有足够的抗流感病毒抗体可以抑制凝集反应。随着血清稀释度 的增加,抗体逐渐减少, C R B C 凝集逐渐变得明显。 B S A 偶尔会引起干扰;如出现干扰,介质中可不用B S A 。 9 . 将完全抑制凝集反应的最大稀释度作为每列的终点(一系列稀释度中最后一个形成 C R B C 沉淀的孔)。计算每一样品的H A I 滴度。如果多个重复组的滴度差异高于1〜 2 倍稀释度,须重新滴定。 辅 助 方 案 9 流 感 病 毒 储 存 液 (原 液 )的系列稀释 材 料 (带 V 项 目 见 附 录 1) 已滴定的流感病毒原液(见辅助方案2 和 4) V 无 菌 PBS 15m l 无菌圆锥管 注 : 本例我们随意选取了浓度为I O U 1的病毒原液。 1 . 将 1 0 7,31的 病 毒 原 液 加 入 含 P B S 的 1 5 m l 无 菌 离 心 管 内 完 成 1 •• 2 0 . 4 的 稀 释 (即 0• 5 m l病毒原液加入至 9. 7 ml P B S 内),可以得到 IO6 T C ID 5OAOiU l病毒液。 2 . 取 6 只 标 记 的 15m l 无菌圆锥管,每 只 含 有 9m l P B S 。取 Iml IO6T C I D 5。病毒液加入 离心管内并振荡,所得样品为l〇5T C I D 5。。 3 . 重复上述操作得到一系列稀释浓度直至1〇 2。单 独 加 P B S 至 剩 余 管 内 (0 T C I D 5。)。 基本方案2 从脾脏前体细胞获得流感病毒特异性的细胞毒T淋巴细胞(CTL) 材 料 (带 V 项 目 见 附 录 1) 感染流感病毒A 的 B A L B /c 小 鼠 6〜8 周 龄 (见基本方案1 或备选方案) 感染流感病毒B 的 B A L B /c 小 鼠 6〜8 周龄 V 无 菌 I3BS 10%?33的1!^〇]\/1〇 7\〇 (1^〇]\4-10)含有50/^/〇 11庆大霉素, 1001;/1111青霉 素 , 100Mg/m l 链霉素, 2. 5iug/m l 两性霉素和50Mmol/L 2-巯基乙醇 尿囊液内1〇 9 丁 0 ^ 5〇 113见流感病毒八(如8/1沈/40; 八丁丁(:#乂 [101)(见 辅 助 方 案 1, 2 , 4) 无菌玻璃组织匀浆机(Fischer Scientific) 75cm2组织培养瓶 15m l 和 50m l 无菌聚丙烯圆锥管 D P R -6000离心机、 253转子或相当的台式离心机 37°C , 5 % C 〇 2培养箱 1 . 通过注射2 倍麻醉剂量的氯胺酮/赛 啦 嗪 麻 醉 液 (附 录 2D ) 处死感染流感病毒A 的 恢复期小鼠,同样方法处死感染流感病毒B 或模拟感染的小鼠。
2 . 无菌取脾脏,放 入 有 6ml I M D M -I O 溶液的无菌玻璃勻浆管内研磨。 3 . 将细胞悬液吸至15m l 无菌离心管内, 200g 离 心 lOmin。弃 上清,用 6m l 的 I M D M - 1 0 溶液重悬淋巴细胞。 4•取4m l 淋巴细胞和14ml I M D M -I O 加 入 75cm2组织培养瓶内。剩 余 的 2m l 淋巴细胞 悬 液 200g 离 心 lQmin,去上清仅留0 •5ml。将 沉 淀 重 悬 于 I m l 含 IO9 T C I D 5。 H 3N 2 型流感病毒A 的尿囊液内。将细胞置于37°C , 5 % C 0 2培养箱内孵育I.25h ,孵化期 间不定时轻轻振荡细胞。 5. 200g 离 心 IOmin细胞。弃上清,用 5ml I M D M -I O 重悬细胞,离 心 、弃上清,共洗 两次。然后再次将细胞重悬于2m l 的 I M D M -I O 中。将 2m l 作为同基因刺激原的致敏 脾细胞加入到含有剩余脾细胞的培养瓶内(步 骤 4),那 里 的 C T L 前体细胞已分化为 C T L 效应细胞。置 于 37°C , 5 % C 0 2培养箱内培养5d 。 6 . 将每个培养瓶内液转移至50m l 离心管内, 200g 离 心 lOmin。 由于菌株间的差异,确切培养时间需通过预实验确定(一 般 5〜7d)。 7 . 将沉淀重悬于5ml I M D M -I O 中。台盼蓝染色计数活细胞(附 录 3C ) ,将细胞浓度调 整 至 3 X 106个细胞/ml。将这些细胞与流感病毒致敏,51C r 标记 的 P 815细胞混合测量 抗流感病毒C T L 活性。 基 本 方 案 3 收集含抗流感病毒C TL 的肺脏细胞 材 料 (带 V 项 目 见 附 录 1) 流感病毒感染的小鼠(基本方案1 或备选方案) V 无 菌 PBS 含及不含 50U/ml 胶 原 酶 (Sigma) 的 I M D M /10% ( V A O FBS (I M D M -IO) V A C K 溶解缓冲液 60m m 无菌培养皿 无菌剪刀 37°C , 5 % C 0 2培养箱 组织研磨成套器件,包括无菌组织研磨钵,玻璃杵, 6 0 目 滤 网 (如 Sigma C D -I) 15m l 无菌离心管 1 . 通过注射2 倍麻醉剂量的氯胺酮/赛 啦 嗪 麻 醉 液 (附 录 2D ) 处死流感病毒A 感染后 第 7 天小鼠。 从 小 鼠 肺 脏 获 取 的 淋 巴 细 胞 数 量 因 小 鼠 个 体 、品 系 及 处 死 的 时 间 而 不 同 。 B A L B /c 小鼠感染后第7 天单肺可得淋巴细胞IO6〜IO7,而感染后第5 天可得淋巴细 胞 IO5〜IO6。 2 . 无菌取出小鼠肺脏。无 菌 P B S 冲 洗 并 置 于 60m m 无 菌 培 养 皿 (含 50U /m l 胶原酶 IMDM-IO 10ml)。将肺脏切成小碎块, 37°C , 5 % C 0 2培养箱孵育lh。 3 . 将肺脏碎块移置于6 0 目钢网的组织研磨钵内,研磨肺脏使其通过钢丝滤网,用 IOml I M D M -I O 冲洗滤网。收 集 至 15m l 无菌离心管后200g 离 心 lOmin。弃上清后将沉淀 重 悬 于 A C K 溶解缓冲液5min。
4•加5ml I M D M -I O 培养液, 200g 离 心 lOmin。弃 上 清 用 I M D M -I O 培养液再次冲洗沉 淀 、离心。弃上清将沉淀重悬于2ml I M D M -I O 中。 5 . 可选:将细胞悬液通过尼龙毛柱富集效应性T 细胞群。 6 . 通 过 尼 龙 毛 柱 富 集 T 细 胞 用 于 C r 释 放 试 验 ,并 将 细 胞 密 度 调 整 为 I X IO6个细 胞/m l ,使效应细胞与靶细胞比为10 : 1。 辅 助 方 案 1 0 流感病毒中和试验 材料 D M E M / 5 % (V /V ) 胎 牛 血 清 (D M E M -5, D M E M - 1 0 ) 同时含有 50; xg/ml 庆大霉 素 , lOOU/m l 青霉素, 100Mg/m l 链 霉 素 和 2.5Mg/m l 两性霉素,含有及不含 2.5X 105M D C K 细 胞 (A T C C # C C L -34) 流感病毒感染的小鼠血清(见基本方案1 或备选方案) 已滴定的50TCID5()/50M1 的 流 感 病 毒 (见辅助方案4) D M E M /0.0002% W Y ) 胰 蛋 白 酶 同 时 含 有 50fxg/ml庆 大 霉 素 , l O O U / m l 青霉 素 , lOO/ ig/ml链霉素和2. 5jLtg/ml两性霉素 PBS 配置 0. 5 % (V /V ) C R B C (Clonetics; 见辅助方案 7 , 步骤 1〜3) 无 菌 9 6 孔圆底带盖组织培养用微孔板 多通道移液器 37°C , 5 % C 0 2培养箱 1 . 向 9 6 孔 圆 底 板 A 行 各 孔 加 90M1 含 抗 生 素 、 5 % F B S 的 D M E M 。 B 〜G 行各孔加 50M1, H 行各孔加1 0 0 4 。 如果血清稀释度要> 1 : 640,可 增 加 稀 释 孔 进 行 系 列 稀 释 (从 第 1〜1 1 列系列 稀释后最终的稀释度为1 : 10 240)。 2. A 行相邻的两孔加10^1血清样品。用多通道移液器混合血清及培养液8〜1 0 次 。 3 . 将 A 行每孔转移50M1样 品 至 B 行各孔并混合。重 复 1 : 2 稀释直至G 行 。 G 行各孔 拋弃多佘的50/xl。 4 . 取两安瓿已滴定的50T C I D 5Q/50; xl的流感病毒,用 D M E M 稀 释 病 毒 原 液 ITCID50/ 50^1。通过系列稀释证实病毒滴度(见辅助方案8) 5 . 各 孔 加 5〇 4稀 释 后 病 毒 液 (除用于滴定病毒原液的孔)。 37°C 孵 育 lh。 每孔加入病毒50TCID5Q,本实验中,如果最终病毒量为10〜IOOTCID5q则可获 得相同的病毒中和滴度。 6 . 取出滴定板,向各孔加入I O O W 含 2.5X 105个 M D C K 细胞/ml。 37°C , 5 % C 0 2培养 箱 中 过 夜 (见辅助方案3)。 7 . 用多通道移液器小心吸取各孔培养液,更换枪头吸取对照孔(H 孔)培养液。 8 . 向各孔加200/xl含抗生素D M E M /0.0002%胰蛋白酶培养液,置 于 37°C , 5 % ( :0 2中 培 养 4d 。 9 . 向各孔加50; xl的 0 . 5 % C R B C / P B S 溶 液 , 4°C孵 育 lh。检查各孔是否出现凝集。将 两相同样本孔均未出现C R B C 凝集反应的血清最高稀释度的倒数作为每种血清的病
毒中和滴度。 含足够浓度抗流感病毒中和抗体的微孔内,病 毒 不 会 感 染 C R B C 细胞,病毒复 制也不会发生。所加入的C R B C 细胞将会在微孔的底部形成C R B C 细胞沉淀。可以 通 过 H 行得到确认。不含或未含有足够浓度抗流感病毒中和抗体的微孔内,培 养 4d 后将会出现流感病毒。加入这些孔内的C R B C 细胞将会被凝集。流感病毒交叉连接 C R B C 细胞,抑制其形成沉淀,孔内将出现混浊。

来源:丁香实验

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