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活细胞免疫荧光技术-流式细胞仪标本的制备

相关实验:流式细胞仪标本制备

最新修订时间:

原理

制备活性高的细胞悬液(培养细胞系、外周血单个核细胞、胸腺细胞、脾细胞等均可用本法)

1. 用 10% FCS-RPMl 1640 调整细胞浓度为 5×106-1×107/ml;

2. 取 40 μl 细胞悬液加入预先有特异 McAb(5-50 μl)的小玻璃管或塑料离心管,再加 50 μl 1:20(用 DPBS 稀释)灭活正常兔血清;

3. 4℃ 静置 30 min;

4. 用洗涤液洗涤 2 次,每次加洗涤液 2 ml,离心 1000 r/min,5 min;

5. 弃上清,加入 50 μl 工作浓度的羊抗鼠(或兔抗鼠)荧光标记物,充分振摇;

6. 4℃ 静置 30 min;

7. 用洗涤液洗涤 2 次,每次加液 2 ml,离心 1000 r/min,5 min;

8. 加适量固定液(如为 FCM 制备标本,一般加入 1 ml 固定液,如制片后在荧光显微镜下观察,视细胞浓度加入100-500 μl 固定液);

9. FCM 检测或制片后荧光显微镜下观察,(标本在试管中可保存5-7天)

材料与仪器

细胞样品、兔血清、第二抗体、单克隆抗体、FCS-RPMI 1640、DPBS、玻璃管、塑料管、离心机、荧光显微镜;

步骤

制备活性高的细胞悬液(培养细胞系、外周血单个核细胞、胸腺细胞、脾细胞等均可用本法)

1. 用 10% FCS-RPMl 1640 调整细胞浓度为 5×106-1×107/ml;

2. 取 40 μl 细胞悬液加入预先有特异 McAb(5-50 μl)的小玻璃管或塑料离心管,再加 50 μl 1:20(用 DPBS 稀释)灭活正常兔血清;

3. 4℃ 静置 30 min;

4. 用洗涤液洗涤 2 次,每次加洗涤液 2 ml,离心 1000 r/min,5 min;

5. 弃上清,加入 50 μl 工作浓度的羊抗鼠(或兔抗鼠)荧光标记物,充分振摇;

6. 4℃ 静置 30 min;

7. 用洗涤液洗涤 2 次,每次加液 2 ml,离心 1000 r/min,5 min;

8. 加适量固定液(如为 FCM 制备标本,一般加入 1 ml 固定液,如制片后在荧光显微镜下观察,视细胞浓度加入100-500 μl 固定液);

9. FCM 检测或制片后荧光显微镜下观察,(标本在试管中可保存5-7天)

注意事项

1. 整个操作在 4℃ 下进行,洗涤液中加有比常规防腐剂量高 10 倍的 NaN3,上述实验条件是防止一抗结合细胞膜抗原后发生交联、脱落。

2. 洗涤要充分,以避免游离抗体封闭二抗与细胞膜上一抗相结合,出现假阴性。

3. 加适量正常兔血清可封闭某些细胞表面免疫球蛋白 Fc 受体,降低和防止非特异性染色。

4. 细胞活性要好,否则易发生非特异性荧光染色。

来源:丁香实验

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