各位丁香园的站友好,本人最近在做选悬浮细胞的免疫荧光遇到一个自己无法解决的问题。如图中所示,这些细胞都是没有药物未处理的,每张图从左到右分别是目的蛋白β-catenin、细胞核(DAPI染色)、merge。正常来说β-catenin应该分布在细胞浆为主,但奇怪的是基本视野下β-catenin都和DAPI重合了,如图2和图4,限于篇幅我只上传有代表性的图片,就是说都分布于细胞核,这个理论上说不通啊。其中图1图2是同一张片子,图3图4是另一张片子,都是慢粒细胞系K562,图5来自leukemia上的一篇文献。图1图3可以看到胞浆分布的是在共聚焦显微镜下找了好久才找到的,而且只有这么一个视野能看到β-catenin的胞浆分布。后面做了几次,视野下全部的β-catenin都核DAPI重合了,想找一个β-catenin分布在胞浆的视野都没有。我看过相关文献,基本是分布于胞浆的。不知道各位站友有没有遇到过这个问题?下面附上我的实验protocol,望各位兄弟姐妹好心解答一下,看看哪里操作有问题,不胜感激!
实验protocol:
第一天:
1. 用甩片机甩片,1000rpm/min,10minutes,每个载玻片细胞数undefined105。
2. 免疫组化笔在细胞旁画圈,用4%的多聚甲醛固定细胞20min,PBS浸洗玻片3次,每次3min;
3. 0.5%Triton X-100(封闭液配制)室温通透20min;(封闭液成分:10%羊血清+90%PBS)。PBS摇床洗涤3次,每次3 min。
4.在玻片上滴加封闭液(10%羊血清+90%PBS),室温封闭1小时;
5.吸水纸吸掉封闭液,不洗,每张玻片滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒,4℃孵育过夜;
第二天:
6. 室温恢复15min,PBS摇床洗涤3次,每次3min,吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗,常温孵育1h,后续操作一直避光。 PBS摇床洗涤3次,每次3min。
7. 复染核:滴加DAPI避光孵育5min,对标本进行染核,PBS摇床洗涤3次,每次3min;
8. 用吸水纸吸干载玻片上的液体,用含抗荧光淬灭剂的封片液封片,然后在荧光显微镜下观察采集图像。