牛马研究生
需要从大鼠的各个组织里面提取DNA,然后需要A260/A180在1.8以上的,因为之前没试过提取DNA,也看了许多的试剂盒,但是因为样本量比较大所以还是希望学习一下酚氯仿法提取组织DNA,请问哪位大神可以给我一个具体的组织提取DNA的流程,以及需要的试剂呢,我搜来的方案都不太一样
土井挞克树
动物组织提取DNA
用SDS或二甲苯酸钠等去污剂使蛋白质变性, 可以直接从生物材料中提取DNA。
由于细胞中DNA与蛋白质之间常借静电引力或配位键结合, 而阴离子去污剂能够破坏这种价键,所以常用阴离子去污剂提取DNA。
秋秋欣欣
1.实验前动物应饥饿12h以上。
2.称取组织,放在培养皿中,用剪刀剪碎,放入匀浆器研磨,加入6ml,氯化钠-柠檬酸钠缓冲液,装在10ml 离心管中。将匀浆物在4000r/min下离心1 0min。
3.将上述沉淀转入50m1大试管中,加入6ml氯化钠-柠檬酸钠缓冲溶液、3ml 氯仿-异戊醇混合液,0. 5m1SDS使其终浓度为0.41%,手摇15min,然后缓慢加入氯化钠固体(有0. 55g),使其终浓度为1mol/L。慢摇5min是氯化钠充分溶解。
4.将上述混合液在4000r/min离心15min, 取上清液于50ml烧杯中加入等体积冷95%乙醇,边加边用玻璃棒慢慢搅动,将缠绕在玻璃棒的凝胶状物用滤纸吸取多余的Z醇,即得DNA粗品。
5.显色反应:取上述反应物2ml加入二苯胺试剂2ml沸水浴加热,观察颜色。
loveliufudan
以下是酚氯仿法提取组织DNA的流程及所需试剂:
材料:
组织样本
离心管
液氮
酚/氯仿/异戊酮 (25:24:1)
氯仿
乙醇(70%和绝对乙醇)
TE缓冲液(10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA, pH 8.0)
RNase A(10 mg/mL)
步骤:
将组织样本切成小块,用液氮冷冻保存。
将组织块放入离心管中,加入约10倍体积的酚/氯仿/异戊酮,用匀浆器彻底打碎。
在室温下振荡混合离心管,离心10分钟(12000g,4°C)。
将上层的上清液转移到新的离心管中,加入等体积的氯仿,振荡混合离心管,离心10分钟。
将上层上清液转移到新的离心管中,加入等体积的乙醇(70%),混合均匀。
将混合液转移到DNA捕获柱中(或者用纱布滤去组织碎片),离心柱上样。
用洗涤缓冲液(含乙醇)洗涤柱,去除杂质。
加入低盐洗涤缓冲液(含乙醇),洗涤柱,去除残留的盐和其他杂质。
加入去离子水洗涤柱,将DNA洗脱,转移至新的离心管中。
加入RNase A(终浓度为100 μg/mL),37℃孵育30分钟,去除RNA污染。
用紫外分光光度计测定DNA的浓度和A260/A280比值。
注意事项:
在提取过程中要注意防止DNA受到污染,如手套、纯水、无菌环境等。
离心步骤要保证离心管密闭,离心过程中不能晃动或震动。
贮存DNA时要避免受到紫外线照射和高温,以保证DNA的完整性和稳定性。
huarenqiang5
动物组织DNA提取步骤
1、处理材料:取动物组织10mg,尽量切碎,加200μl缓冲液GA,振荡至彻底悬浮。
2、加入20μl蛋白酶K溶液,混匀后56℃水浴,直至组织溶解。简短离心以去除管盖内壁的水珠,再进行下一步骤。
3、加入200μl缓冲液GB,充分颠倒混匀,70℃放置10分钟,溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁水珠。
4、加入200μl无水乙醇,充分振荡混匀15s,此时可能出现絮状沉淀,简短离心以去除管盖内壁的水珠。(沉淀DNA)
5、将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CB3中,吸附柱放入收集管中,12,000rpm(~13,400×g)离心30s,倒掉废液,将吸附柱CB3放回收集管中。(吸附沉淀)
6、向吸附柱CB3中加入500μl缓冲液GD(使用前先检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm(~13,400×g)离心30s,倒掉废液,将吸附柱CB3放回收集管中。
7、 向吸附柱CB3中加入700μl漂洗液PW(使用前先检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm(~13,400×g)离心30s,倒掉废液,将吸附柱CB3放回收集管中。
8、向吸附柱CB3中加入500μl漂洗液PW,12,000rpm(~13,400×g)离心30s,倒掉废液。(6、7、8为漂洗)
9、将吸附柱CB3放回收集管中,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的残留会影响后续的PCR等实验。
10、将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加50-200μl洗脱缓冲液TE,室温放置2-5min,12,000rpm(~13,400×g)离心2min,将溶液收集到离心管中。(溶解洗脱DNA)
注意:采用硅基质膜吸附的DNA,可将DNA在低盐高pH值条件下洗脱下来。pH值在7.0-8.5之间洗脱效率较高,pH值低于7.0则洗脱效率很低。
洗脱缓冲液体积不应该少于50μl,体积过小影响回收效率。为增加基因组DNA的得率,可将离心得到的溶液再加入吸附柱CB3中,室温放置2min,12,000rpm(~13,400×g)离心2min。DNA产物应保存在-20℃,以防止DNA降解。
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