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热蛋白组学实验,在用液氮冻融裂解hepG2细胞后,BCA定量细胞蛋白浓度过低是什么原因呢?

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我怎么123

我取了大约300万hepG2细胞,用含1%EDTA-free protease inhibitor 的PBS做缓冲液,三次冻融循环后,用BCA试剂盒定量出蛋白的含量仅仅只有0.85mg/ml。但之前用裂解液裂解100万细胞就可以达到1.4mg/ml,预料到可能液氮冻融裂解效果会差一些,但感觉有点太差了,是300万细胞量太少了吗?

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3 个回答

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huarenqiang5

有帮助

主要考虑:1.可能细胞状态不好;2.蛋白与蛋白间性质差异大;3.BCA反应非线性,测定时可能出现偏差,要精度准确,做标准曲线时的点设置多些;4.试剂BCA,一般最低检测限5ug/ml,

灵敏度要达到1ug/ml,必须采取加强法测定,比如样品多加几倍。

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loveliufudan

有帮助

液氮冻融裂解细胞的效果通常比较好,而且使用含1% EDTA和蛋白酶抑制剂的PBS做缓冲液也是正确的。因此,可能的原因有以下几点:

细胞数目不足:用300万个HepG2细胞来做热蛋白组学实验的话,可能会偏少。如果可以,您可以尝试增加细胞数目来裂解获得更多的蛋白质。

冻融次数过多:尽管液氮冻融裂解通常是高效的方法,但三次冻融循环可能会导致蛋白质的降解或者流失,因此可能会降低蛋白浓度。

蛋白质含量的检测方法不准确:BCA方法是一种比较敏感的蛋白质定量方法,但是在一些情况下可能会出现误差。您可以尝试使用其他的蛋白质定量方法来验证您的结果,比如Bradford方法。

总之,为了确保获得足够的蛋白质,您可以尝试增加细胞数目或者尝试使用其他的细胞裂解方法。

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毛利小五郎的徒弟

有帮助

裂解过程中破坏的太多了,改进一下提取方法,要不然需要的细胞太多了。

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我怎么123user-title

但热蛋白组学实验我看用的都是冻融法,在提取的缓冲液中加蛋白酶抑制剂,核酸酶这种试剂可以吗


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