丁香实验_LOGO
登录
提问
我要登录
|免费注册
点赞
收藏
wx-share
分享

细胞生物基本方法:常规组织培养法

互联网

695

 

常规组织培养法

 

1 )初代消化培养法

 

1.      准备:取各种已消毒的培养用品置于净化台面,紫外线消毒 20 分钟。开始工作前先洗手、 75% 酒精擦拭手至肘部。

2.      布局:点燃酒精灯,安装吸管帽。

3.      处理组织:把组织块置于烧杯中,用 Hanks 液漂洗 2~3 次,去除血污;如怀疑组织可能污染,可先置于含有青链霉素的混合液中 30~60 分钟。

4.      剪切:用眼科剪把组织切成 2~3 毫米大小的块,以便于消化。加入比组织块总量多 30~50 倍的胰蛋白酶液,然后一并倒入三角烧瓶中,结扎瓶口或塞以胶塞。

5.      消化:或用恒温水浴,或置于 37 ℃温箱消化均可,消化中每隔 20 分钟应摇动一次,如用电磁恒温搅拌器消化更好。消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。

6.      分离:在消化过程中见消化液发混浊时,可用吸管吸出少许消化液在镜下观察,如组织已分散成细胞团或单个细胞,立即终止消化,随即通过适宜不锈钢筛,滤掉尚未充分消化开的组织块。低速( 500~1000 / 分)离心消化液 5 分钟,吸出上清,加入适量含有血清的培养液。

7.      计数:用计数板计数,如细胞悬液细胞密度过大,再补加培养液调整后,分装入培养瓶中。对大多数细胞来说, pH 要求在 7.2~7.4 范围,培养液呈微红色,如颜色偏黄,说明液体变酸,可用 NaHCO3 调整。

8.      培养:置于 36.5 ℃温箱培养,如用 CO2 温箱培养,瓶口需用纱布棉塞或螺旋帽堵塞,纱布塞易生霉菌,每次换液时需要换新塞。

 

 

2 )初代组织块培养法

 

1.      剪切:把组织小块置于小烧杯或青霉素小瓶中,用 Hanks 液漂洗二三次以去掉表面血污,吸静 Hanks 液,用眼科剪反复剪切 1mm3 块为止。

2.      摆布:用弯头吸管吸取若干小块,置于培养瓶中,用吸管弯头把组织小块摆布在培养瓶底部,小块相互距离以 0.5cm 为宜,每一 25ml 培养瓶底可摆布 20~30 块。

3.      轻轻翻转培养瓶,另瓶底向上,注意翻瓶时勿另组织小块流动,塞好瓶塞,置 36.5 ℃温箱培养 2 小时左右(勿超过 4 小时),使小块微干涸。

4.      培养:从微箱中取出培养瓶,开塞, 46 度斜持培养瓶,箱瓶底脚部轻轻注入培养液少许,然后缓缓再把培养瓶翻转过来,让培养液慢慢覆盖附于瓶地上的组织小块。置温箱中静止培养。待细胞从组织块游出数量增多后。再补加培养液。

 

 

3 )传代培养法

1.      吸除培养瓶内旧培养液。

2.      向瓶内加入胰蛋白酶和 EDTA 混合液少许,以能覆满瓶底为限。

3.      置温箱中 2~5 分钟,当发现细胞质回缩,细胞间隙增大后,立即终止消化。

4.      吸除消化液,向瓶内注入 Hanks 液数毫升,轻轻转动培养瓶,把残余消化液冲掉。注意加 Hanks 液冲洗细胞时,动作要轻,以免把已松动的细胞冲掉流失,如用胰蛋白酶液单独消化,吸除胰蛋白酶液后,可不用 Hanks 液冲洗,直接加入培养液。

5.      用吸管吸取营养液轻轻反复吹打瓶壁细胞,使之从瓶壁脱离形成细胞悬液。

6.      计数板计数后,把细胞悬液分成等份分装入数个培养瓶中,置温箱中培养。

 

提问
扫一扫
丁香实验小程序二维码
实验小助手
丁香实验公众号二维码
扫码领资料
反馈
TOP
打开小程序