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气相色谱层析技术原理、基本部件以及条件选择

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液相色谱和气相色谱技术
(一)基本原理
混合样品的气流通过固定相时,根据各组分对固定相的吸附强弱不同使不同成分得到分离。
利用气相色谱 层析技术做为微生物诊断的工具已成功地用于微生物的分类和鉴定。该法敏感性强,能够分离和检测到毫微克的水平。它具有快速的特点,常在数十分钟甚至数小时就可以对传染病做出早期诊断。其结果稳定,重复性好,但不足之处是操作中各因素不易控制,方法不易标化等。
(二)气相色谱仪 的基本部件
1. 载气 常用的载气主要有氮、氩、氢和二氧化碳等。这些气体一般都由高压气瓶供给。
2. 进样器 气相色谱仪 可以用于分离固相、气相和液相标本。液相标本采用微升注射器穿过橡皮隔片注入,气相标本采用特种气相注射器注入。
3. 谱柱及加热炉 色谱柱一般由金属或玻璃制成,通常采用的柱长2m~4m,内径2mm, 毛细管柱长度可达20m~150m,内径为0.2mm。
载体 一般采用惰性、多孔的固体颗粒。多由硅藻土或玻璃珠制成,分析不同极性的微生物化合物,为了获得最适的分离条件,要求有不同固定相的载体。目前比较常用的载体有:聚乙二醇(CarbOwax 20M)、F F A P(聚乙二醇20M和2-硝基对苯二甲酸的反应产物),OV—17(苯基甲基硅酮)。OV-210、SE-30(甲基硅酮)、Chromosorb G(白色硅藻土载体)等。柱加热炉在温度控制上是非常重要的。
4. 纪录仪
5. 数据处理装置 一般均附有数据处理计算机。
气相色谱仪 的基本流程图如下图1-1:
  进 样 器   计 算 机
   


 



 



 

 

 

                       
图1 气相色谱仪的基本流程
(三)试验条件的选择
1. 色谱柱的选择 要注意极性及最高使用温度,柱温不能超过最高使用温度。固定相按极性相似的原则选择。
色谱柱的内径大小、长度都能影响分离率。一般而言,内径越小,长度越长,分离效果越好,一般柱长为1m~5m(毛细管柱则20m~100m)。
填充剂颗粒一般采用40目~60目,60目~80目及80目~100目大小。长柱子宜用粒度大些的,以减少柱压降,短柱子则用粒度细的。
气相色谱中固定液的含量对分离效率的影响较大。一般采用固定液与载体重量之比为15︰100~25︰100。采用高灵敏度的检测器,由于进样量减少,固定液含量可以降至5︰100以下。这样可以使用较低柱温,从而提高柱效,缩短分析时间。但固定液用量太少会引起吸附。
2.柱温选择 柱温选择对分离度影响很大,常是条件选择的关键。选择的基本原则是:在使最难分离的组分有尽可能好的分离高度的前提下,尽可能采取较低温度,但以保留时间适宜及不拖尾为度。
⑴ 高沸点混合物(200℃~400℃),若需在较低的柱温下分析,可采用低固定液配比1%~3%,采用高灵敏检测器,柱温可比沸点低100℃~150℃,在200℃~250℃的柱温下分析。
⑵ 沸点<300℃的样品,可用3%~25%固定液配比。沸点越低,所用配比越高,柱温可比平均沸点低50℃至平均沸点的范围选择。
3.载体选择 载体采用低线速时,宜用氮气;高线速时用氢气。柱越长,柱内有较大压力降,宜用氢气。载气采用低线速时为20ml~80ml/min。
4.其它条件
⑴ 气化室温度及检测室温度选择:气化温度取决于样品的挥发性、沸点、稳定性以及进样量,一般选择稍高于样品沸点,但不要超过沸点50%以上,以防分解。检测室温度需高于柱温,一般高于柱温30℃左右或与气化室同温。
⑵ 进样量:固定相在配比15%~35%的层析柱时,最大进样量液体为10&mu;l,气体为10ml。一般样品量液体4&mu;l,气体为0.5ml~3ml,固体小于1mg。
⑶ 桥电位选择:散热多和选择大的桥电位,在灵敏度相同的情况下,应尽量选择低桥电位,以保护热敏元件。
(四)填充柱的制备
1.称取一定量的载体于蒸发皿中,加2倍于载体体积的低沸点溶剂(氯仿丙酮、三氯甲烷等),使之溶解。
2.取适量的固定液,倒入蒸发皿中,拌匀。注意应使载体全部覆盖在液面下,于红外灯下缓缓加热,不时轻轻搅拌,待溶液全部挥发。
3.先将柱的一端用玻璃毛轻轻堵上,接上吸滤真空泵,柱的另一端接上漏斗,将填充剂从漏斗加入,同时启动真空泵,不时轻敲柱子各部,以使填充均匀。装满后,关闭真空泵,取下色谱柱,将加样的一端也填上一小团玻璃毛。
4.将柱装入色谱柱中,在通载气前,先将炉温升至略高于操作温度,保持约1h,以使固定液受热熔化或粘度减小,在载体表面流布均匀,然后再通入载气,使色谱柱在操作温度下,通载气数小时。
(五)样品处理
以细菌培养物样品的处理为例。
1.取3~5个菌落,接种于2ml含有3%葡萄糖TSB肉汤(即含胰酶1.42%、植物胨 0.25%、K2H PO4 0.25%NaCl、0.42%的肉汤)内,35℃~38℃培养3h。
2.于培养物中加2ml 5Mol/L H2SO4、H2O和CH3OH(1︰3︰16),混合后,再加4ml醋酸乙脂浸取,混匀,静置片刻。
3.4 000r/min离心15min,弃沉淀。
4.取上清液加等量乙醚提取,收集乙醚层。
5.于水层中再加上述比例的5 Mol/L H2 SO4、H2O和CH3OH混合物。
6.于混合物中加等量氯仿提取,分层,收集氯仿层,弃去水层。
7.将乙醚层与氯仿层合并,挥发浓缩至0.01ml,加10&mu;g已二酸作内标物,再加20&mu;g甲氯基胺-HCl。
8.于混合物中加0.2ml吡啶,再加0.2ml TRI-SIL-BSA和0.05ml TMOS,混匀,60℃孵育1h,离心,去沉淀。
9.上清即可制谱。
(六)操作方法
1.按流程图并参考仪器使用说明书,将有关设备安装好,检查各系统各接头是否漏气,确定无误后,可开始操作。
2.打开气流总阀门,调节表头上的减压阀,使气体压力为22kg/cm2左右,调节稳压器针形阀,使载气流速控制在所需要的流速值。
3.加热色谱柱至所需的柱温并控制此温(根据仪器恒温箱的性能控制温度波动值在一定的范围之内,如±0.5℃)。一般所用的柱温是在被分析物质的平均沸点左右或更低一些。若被分析物的沸程太宽,则可用程序升温法来升高柱温。
4.加热进样器(气化室),使温度高于样品沸点的最高组分的沸点。
5.加热检测器恒温箱,使温度与柱温一样或高于一定的值。
6.气流和温度均达稳定后,给检测器通电流。若采用氢火焰离子化检测器则启动微电流放大器部分。
7.调检样器为零点,待稳定后,即可开始进样。
(七)结果分析
气相色谱层析是一种分离分析的方法,因此它的特点是适合于多组分混合物的定性和定量分析。
1.定性 对于一已知范围的混合物,用此法定性很容易,但对于范围未知的混合物来说,则需要配合化学分析及其它仪器分析等。
⑴ 利用保留值定性法:同一种物质在一根层析柱上保留时间相同。取样品各可能组分的纯物质加入样品中,混合进样,对此加入后的色谱图,若某色谱峰相对谱高,则该色谱峰的组分与纯物质可能为同一物质。
⑵ 化学反应定性法:即把色谱柱的流出物,通过官能团试剂中,观察试剂的颜色是否发生变化或是否有沉淀,而判断该组分含什么官能团或属于何类化合物。
⑶ 两谱联用定性法:即利用质谱仪、红外分光光度计等来进行测定,定性。
2.定量 在实验条件恒定时,峰面积或峰高与组分的含量成正比,因此可以利用峰面积或峰高面积或峰高来进行定量。对于微生物标本的气相色谱分析常根据以下几点来进行比较。
⑴ 峰的有无和峰的大小。
⑵ 按10个重复标本分析计算的平均t值(标准差)。
⑶ 同标准化合物的相对保留时间进行对比,而对某化合物做出鉴定。
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