EAC玫瑰花环试验
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原理
B淋巴细胞表面具有补体C 3 受体,红细胞可与相应的抗体(溶血素)结合形成抗原抗体复合物(EA),以红细胞作为指示细胞,通过补体传统途径活化补体,而产生活化的C 3 ,然后与活化的C 3 结合形成花环,以供计数B淋巴细胞。
材料与 试剂
1.鸡红细胞悬液的制备 由于绵羊红细胞易与T淋巴细胞形成E—玫瑰花环,易造成混淆,所以一般在检测B淋巴细胞时,采用鸡红细胞。从鸡翼下静脉采血,用肝素抗凝,以Hank’s洗涤2次备用。
2.抗鸡红细胞抗体的制备 选 2kg ~ 3kg 的健康家兔,以Hank’s液洗过的压积红细胞进行免疫,每日背部皮下注射1次,共注5次,注射量为0.5 ml、1.0 ml、1.5 ml、2.0 ml、2.5ml。第六次改用静脉注射50%压积红细胞悬液1ml,一日一次,连注3天。末次注射后7天试血,测定红细胞的凝集效价,以出现“ ”的最高抗血清稀释度判定为血凝效价。效价达1:2 000以上者为合格。应用时采用凝集价的1/2(亚凝集价)作为抗血清的稀释度(即1:4 000)。
溶血素的效价测定
试验组 |
对照组 |
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管号 |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
溶血素稀释倍数 |
10 |
10 2 |
10 3 |
2×10 3 |
3×10 3 |
4×10 3 |
5×10 3 |
|
1 %红细胞量(ml) |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
|
溶血素量(ml) |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.9%盐水(ml) |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
0.1 |
混匀, 37℃ 感作1h |
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结果判定 |
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- |
- |
- |
- |
3.补体 当日采集豚鼠混合血清,用Hank’s液稀释成1︰100,置 4℃ 保存备用。
4.无Ca 2 、Mg 2 pH7.2的Hank’s液
5.姬姆萨染液
6.1%戊二醛溶液
操作方法
1.分离淋巴细胞,制成约2.5×10 6 个/ml悬液。
2.EAC悬液的制备 取4%鸡红细胞2ml于 试管 中,加入1︰4 000的鸡溶血素2ml,混匀,置 37℃ 水浴 15min,取出后离心,用Hank’s液洗涤2次,再用Hank’s液恢复至4%红细胞2ml,加入等量的1︰100稀释补体,混匀,再放置 37℃ 水浴 15min取出,用Hank’s液洗涤2次,配成4%EAC细胞悬液。
3.取淋巴细胞悬液0.2ml,加入4%EAC细胞悬液0.2ml,混匀,室温或 20℃ 作用30min。1 000r/min离心5min,吸弃过多的上清液,放入 4℃ 2h~4h。
4.取出后,将沉淀轻轻摇起,加1%戊二醛0.1ml,混匀后置 4℃ 固定30min。
5.以悬液制片,自然干燥,滴加姬姆萨液染2min,加自来水继续放置15min,冲洗,将玻片置95%酒精缸脱色15sec~30sec(以脱成浅紫蓝色为度),再置盐酸液缸(按1%HCl 1份与自来水2份)脱色(呈淡兰略带红色为度)10sec左右,取出冲洗,干后镜检。
结果判定
凡一个淋巴细胞结合3个以上鸡红细胞即为EAC花环形成阳性细胞。共计数200个淋巴细胞,计算花环形成率。
注意事项
1.加入淋巴细胞与鸡红细胞的比例一般以1︰40为宜(1︰30~1︰50),淋巴细胞过少,花环形成率明显减少。
2.淋巴细胞、红细胞、补体均应新鲜,否则花环形成率明显下降。
3.据认为小鼠补体比豚鼠补体更为好,小鼠 血清 中胶固素活化因子(KAF)含量较多,可使大部分C 3 裂解而不易引起溶血