PCR常见问题及对策

PCR常见问题及对策

（一）没有得到扩增产物
（1）酶失活或在反应体系中未加入酶。Taq DNA聚合酶因保存或运输不当而失活，往往通过更换新酶或用另一来源的酶以获得满意的结果。
（2）模板含有杂质。特别是对甲醛固定及石蜡包埋的组织常含甲酸，造成DNA脱嘌呤而影响PCR的结果。
（3）变性温度是否准确：PCR仪指示温度与实际温度是否相符，过高酶在前几个循环就迅速失活；过低则模板变性不彻底。
（4）反应系统中污染了蛋白酶及核酸酶，应在未加Taq酶以前，将反应体系95℃加热5－10分钟。
（5）引物变质失效。人工合成的引物是否正确。是否纯化，或因储存条件不当而失活。
（6）使用PCR试剂盒时还应注意：
①是否严格按照说明书操作；
②试剂使用前是否充分混匀；
③试剂储存过久或不当而失效。
（二）扩增产物在凝胶中涂布或成片状
（1）酶量过高。减少酶量；酶的质量差，调换另一来源的酶。
（2）dNTP浓度过高。减少dNTP的浓度。
（3）MgCl2浓度过高。可适当降低其用量。
（4）循环次数过多；增加模板量减少循环次数，缩短退火时间及延伸时间，或改用二种温度的PCR循环。
（5）退火温度过低。
（6）电泳体系有问题：
①凝胶中缓冲液和电泳缓冲液浓度相差太大；
②凝胶没有凝固好；
③琼脂糖质量差。
（7）若为PCR试剂盒则可能：
①由于运输储存不当引起试剂盒失效；
②试剂盒本身质量有问题，如引物选择、循环参数等选择不当。
（8）降解的陈旧模板扩增也易产生涂布。
（三）溴酚蓝前有区带（很宽）
（1）模板量太低。增加模板DNA的用量。
（2）循环次数太多。减少循环次数。
（3）复性度偏低。提高复性温度。
（4）预变性后没有立刻上机循环。
（5）引物3'端是否互补；重新设计合成较长的引物。
（6）引物用量偏多。降低引物的使用量。
（四）扩增产物出现多条带
（1）引物用量偏大，引物的特异性不高。应调换引物或降低引物的使用量。
（2）循环的次数过多。适当增加模板的量，减少循环次数。
（3）酶的用量偏高或酶的质量不好，应降低酶量或调换另一来源的酶。
（4）退火温度偏低，退火及延伸时间偏长。应提高退火温度，减少变性与延伸时间，也可采用二种温度的PCR扩增。
（5）样品处理不当。
（6）Mg2+浓度偏高，因适当调整Mg2+使用浓度。
（7）若为PCR试剂盒，也可能时试剂盒本身质量有问题。
（五）PCR假阳性结果
（1）引物设计不当，应调换引物。
（2）循环参数不合适，导致非特异性扩增。
（3）靶序列的交叉污染。
（六）PCR假阴性结果
（1）引物长度不够。
（2）试剂浓度不标准。
（3）靶序列如突变、缺失等。
（4）循环参数设置错误。
（5）标本中有Taq酶抑制剂。
（6）PCR产物检测系统灵敏度不够。

（希望此贴对大家能有所帮助，希望斑竹能考虑给予加分鼓励，谢谢！）