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大肠杆菌感受态细胞制备及外源DNA的转化

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实验目的

1.了解转化的概念及其在分子生物学研究中的意义。

2.学习氯化钙法制备大肠杆菌感受态细胞的方法。

3.学习将外源质粒 DNA 转入受体菌细胞并筛选转化体的方法。

实验原理

转化( Transformation )是将异源 DNA 分子引入另一细胞品系,使受体细胞获得新的遗传性状的一种手段,它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究的基本实验技术。

转化中的受体细胞: 转化过程所用的受体细胞一般是限制性修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株,常用 RM 符号表示。

转化方法:电击法、 CaCl2、 RuCl等化学试剂

感受态细胞:处理后,细胞膜的通透性发生变化,成为能容许外源 DNA 分子通过时细胞的状态。

转化细胞(转化子):带有异源 DNA 分子的受体细胞( Transformant )。

本实验以 E.coli DH5α 菌株为受体细胞,用 CaCl2 处理受体菌使其处于为感受态,然后与 pUC18质粒共保温,实现转化。 pUC18质粒携带有抗氨苄青霉素的基因,因而使接受了该质粒的受体菌具有抗氨苄青霉的特性,用 Apr符号表示。将经过转化后的全部受体细胞经过适应稀释,在含氨苄青霉素的平板培养基上培养,只有转化体才能存活,而未受转化的受体细胞则因无抵抗氨苄青霉素的能力而死亡。

影响转化率的因素

细胞生长状态和密度。

转化的质粒 DNA 的质量和浓度。

试剂的质量。

防止杂菌和其它外源 DNA 的污染。


离心设备

实验试剂

大肠杆菌DH5α

LB培养基,

0.1mol/LCaCl2溶液(预冷)

氨苄青霉素

pUC18质粒

实验步骤

菌株活化:

1.用接种环直接取冻存的大肠杆菌DH5α,在LB培养基平板表面划线,于37℃培养16小时

2.挑取一个单菌落,转到3-5mlLB培养基中,于37℃培养3-5小时

3.将培养液全部转到100mlLB培养基中培养2-3小时,到OD600=0.3-0.4


感受态细胞制备:

4.将培养液转入1.5ml离心管中,在冰上放置15-30min

5.4000rpm离心5min,弃上清

6.加入0.8ml预冷的0.1mol/l CaCl2,悬浮沉淀,冰上预冷10min

7.4000rpm离心5 min,弃上清

8.加入0.2ml预冷的0.1mol/l CaCl2,悬浮沉淀,即可使用。也可加入总体积15%的甘油 可-70℃长期保存

外源DNA的转化:

9.取目的DNA加入大肠杆菌感受态细胞中,于冰上放置30min

10.于42℃水浴90S

11.冰上放置2min

12.加入800μlLB液体培养基于37培养1小时

13.将培养液均匀涂布在含Amp 的培养基平板上

14.将平板放置于37℃恒温培养箱中培养12-14个小时,然后观察结果

对照组

对照组1: 以同体积的无菌双蒸水代替DNA溶液,其它操作与上面相同。此组正常情况下在含抗生素的LB平板上应没有菌落出现。

对照组2: 以同体积的无菌双蒸水代替DNA溶液,但涂板时只取5μl 菌液涂布于不含抗生素的LB平板上,此组正常情况下应产生大量菌落。

转化率

统计每个培养皿中的菌落数。

转化后在含抗生素的平板上长出的菌落即为转化子,根据此皿中的菌落数可计算出转化子总数和转化频率,公式如下:

转化子总数=菌落数×稀释倍数×转化反应原液总体积/涂板菌液体积

转化频率(转化子数/每mg质粒DNA)=转化子总数/质粒DNA加入量(mg)

感受态细胞总数=对照组2菌落数×稀释倍数×菌液总体积/涂板菌液体积

感受态细胞转化效率=转化子总数/感受态细胞总数

实验结果

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