RNA 萃取实验前必读 成功经验法则大公开
卓立
Lab 的经验和客户的难题
以华联基因体实验室的长期以来承接客户 RNA 检体的经验来说,我们经常遇到的问题:
(1)RNA 的总量不够;
(2)RNA 有严重的盐类污染;
(3)RNA 有严重的有机溶剂污染;
(4)DNA 污染;
(5)样品降解严重。前四项问题都还好解决,只需要再次萃取或进行纯化即可解决,但是样品降解就较为棘手,常常因重新准备检体一来一往, 耗掉不少心力和时间,最后也拿不到好的结果。
客户经常会问为什么执行芯片实验会如此要求RNA 质量呢? 而其他的检测方法如实时定量聚合连锁反应(Real-time Quantitative Polymerase Chain Reaction, Q-PCR)却不需要?
回答这个问题前就要从实验的原理说起,简单 的讲 Q-PCR 的检测原理是针对要检测的基因,设计一对基因特异性的引子,透过反转录反应(RT)配合PCR 的放大方式和及时侦测放大的产物量,藉以回推原始的RNA 含量;而RT的方式主要是采用随机引子(Random_primer)、进行互补DNA (cDNA)的翻制,因此即便RNA有些微裂解,作为模板的RNA也可以忠实的被翻制成cDNA。
但是芯片实验进行,主要是以放大和讯息RNA(mRNA)完全配对的互补RNA(cRNA),再进行杂合反应,此步骤必须利用poly(dT)- T7启动子序列和讯息RNA的poly(A)结合后,将T7启动子序 列连带的镶入反转录的cDNA的5端,再经由T7启动子驱动试管内反转录反应,生合成反股的cRNA ,再进行后续的芯片杂交的实验。可想而知,如果RNA有降解严重的现象,表示许多mRNA并不能忠实的被放大因此会产生许多伪阴性的结果。 至
此读者心中可能就有一个概念了,假设Q-PCR 和芯片被应用在瞎子摸象的故事情节中,用Q-PCR的人只要能摸到大象的耳朵就可以说这里有大象,透过计算耳朵的数量就可以计算大象的数量;但是用芯片实验方法的人,必须先确认所摸到的个体具备大象的完整特征,才能确确实实的说这里有一只大象。这也就说明了为何芯片实验会如此要求RNA的质量。
图一、电泳分析之RNA质量状态,显示质量良好之总RNA(lane 1, 9, 10),部分裂解以及严重裂解之总RNA(lane 8 与 lane 6 and 7),具有DNA 污染之总RNA (lane 4 and 5)以及仅gDNA核酸 (lane 2 and 3) 。 |
图二、吸光值图谱分析,02B检体在230及280分别有高的吸光值,显示分别有盐类 别有高的吸光值,显示分别有盐类(OD230)及有机溶剂(OD280)污染。 |
RNA 萃取的方法有哪些?
除了传统的纯化方法,如 LiCl 沉淀等外,因应 RNA 研究的庞大需求,目前市面上已有许多琳琅满目的 RNA 萃取套组,供给不同萃取需求目的之研究,而这些产品的设计原理不外乎是利用有机溶剂进行分层萃取如:
(1)phenol-chloroform或利用RNA 于酒精中呈现疏水性的特性,进行吸附分离;
(2)吸附性管柱(Silica column)。一般而 言,只要有正确的RNA 操作观念配合正确的步骤,大致上都可以萃取出质量不错的 RNA,但是不同的萃取方法所取得的 RNA 组成分布会有所不同,因此建议要根据所要分析的对象 RNA,选择正确的萃取方法或套组,例如:如果要研究小 RNA 的表现就不可选择以 mRNA 为萃取对象的方法。
此外,内源核醣核酸分解酶(RNase)含量高的样品,建议使用含 phenol-chloroform 的裂解液,以增加去除酶活性的能力。以下就以 TRIzol 的操作步骤为例,来跟读者分享RNA 萃取步骤中应注意事项及改善萃取 RNA 值与量的方法。
器具如何清洁?
RNA 萃取过程中,会面临的最大的敌人就是 RNase,RNase 是一个非常顽强的 RNA 分解酶, 它几乎无所不在,在我们所处的环境中、身体表面甚至细胞内就有内源性的 RNase 存在。
RNase 展现活性时不需要辅酶(coenzyme)或辅因子(cofactor),在变性溶液的环境下虽然会失去活性,但是当去除变性物质后,仍然会展现些许活性,甚至在低浓度的 SDS 溶液中仍具有活性,因此能做到有效杜绝去除 RNase 的污染则 RNA 的萃取就成功了一半。
因此在操作前的首要工作就是,将所有器械置于 180℃ 的高温下干烤 6 小时或更长时间;或者以 3% H2O2浸泡 30 分钟以上,再以灭过菌的 DEPC 水冲洗干净后,用铝箔包覆灭菌后使 用。在操做萃取时必须于清洁、无粉尘飞扬的环境,如果环境允许的话,最好在生物柜或化学柜中操作。
样品如何收集/保存?
先前我们提及细胞内存在有内源性 RNase,且其表现量在不同种类的组织中差异极大。
例如脑组织和心脏组织拥有相对低的内源性 RNase,但是胸腺组织和胰脏组织则保有约 100,000 倍于脑组织的内源 RNase。因此动物组织等最好都先用液氮冷冻起来,再进行后续的处理,不建议直接丢到-80℃ 冰箱。因为急速冻结可冻结 RNase 的活性,但-80℃ 冷冻算是缓慢降温,仍会造成部分 RNA 的降解; 如果无法快速冷冻检体,也可以采用市售的检体保存液,亦可达到不错的效果。
如何进行样品的破碎及均质化?
有关样品的破碎和均质化,这个步骤的重点应该摆在如何让有机裂解液快速浸润检体, phenol-chloroform 可以溶解细胞,连带的会造成蛋白变性,因此内源性 RNase 的活性就会去活化;相反的如果无法让细胞快速裂解使蛋白裸露进而变性,则 RNase 就会降解RNA,因此如何使不同组织细胞快速裂解,就是一个值得思考调整的课题,也是左右成败的关键。
就检体类型来说, 一般培养细胞多为单层细胞不会遇到这样的问题,萃取较为容易,但是立体的组织进行萃取就会遇到均质化不均的问题进而造成 RNA 降解。因此低温的液氮碾磨就是破碎组织最有效的办法,但是液氮碾磨较为麻烦,如果遇到样品数比较多的 时候耗时费功效力不彰,但如果条件允许的话, 这仍然是一个好方法。
但考虑效率和速度,均质机就是一个更好的选择,但是使用均质机的过程有几个重点必须注意:
(1)速度要快,在 RNase 展现 活性前完成细胞均质化;
(2) 避免产热,以免降解 RNA;
(3) 不要过度研磨,过度研磨会打断 DNA, 造成小片段的 DNA 污染。此外,在均质裂解细胞的过程中有一个常被会忽略的重点,就是一般细胞和有机裂解液的比例常被忽略,有些操作者会认为多放一些组织就可以得到大量的 RNA,但是没意识到太多的组织和太少的裂解液,造成细胞 无法完全被裂解,RNase 无法完全被变性,效果反而适得其反,最后 RNA 严重降解。因此如果反应完后均质液太过粘稠无法分层,就必须再加入裂解液。
样品的离心分层
在 phenol-chloroform 的萃取方式中,混合液 的离心转数不可任意调整,应固定于 12000 g 的转 数,以免因沉降系数改变造成无法有效分层。当 离心完成后可以明显观察到检体分成上面水层及 下面有机层,而我们要的 RNA 就溶解在上面水层 中,体积约有 500~600μl 左右。
此时建议用小口 径的 100 或 200μl tip 将水溶液分段吸取到干净的1.5 ml 的离心管中,而在这个步骤常见的失误就是:操作的人急于将水层取出而搅动原先的分层; 或感 觉萃取不易想要多回收一些 RNA,于是将水层尽其可能的取出,因而造成吸取到有机溶液和大量的 DNA 污染(图三),造成后续实验处理上的困扰甚至实验失败,因此强烈建议只萃取7~8成的 RNA水溶液进行下一个步骤,
俗话说的好,所谓有失必有得,不必为了一颗树而放弃整片森林,适时的取舍可以确保后续实验顺利进行。此外一 般来说,phenol与水有一定比例的互溶,所以此时的RNA水溶液中仍有一定的phenol残留,建议一定要再使用chloroform进行一次离心分层去除残存phenol。
图三、染色体DNA污染:安捷伦分析图谱(图右)和 电泳图 ( 图 左 ) 显示检体有大片段和大量小片段DNA污染。 |
RNA 样品的沉淀
一般我们会使用乙醇 (水溶液: 乙醇=1:2.5) 或异 丙醇 (水溶液: 异丙醇=1:1) 进行 RNA 沉淀,在效果上并无明显差异,但是如果已知 RNA 的含量是少 的,则可以使用乙醇沉淀法,并将检体置于-80℃ 冰箱间隔一个晚上再做离心的动作,并配合离心时间的增加,如此可增加 RNA 沉淀的回收率。
RNA 样品的清洗去除盐类
为了去除 RNA 沉淀物中的盐类,我们可以采用70~75% 乙醇进行洗涤,可能的话尽量让核酸沉淀 悬浮起来,最好的是使用两次洗涤,再将离心管放入离心机中离心,用移液器将残留的乙醇小心 吸掉,稍微抽干或吹干核酸沉淀物使残存的乙醇挥发后,再以 DEPC 水进行回溶。
结语
如果以上所阐诉的部分您都注意到了也改善了,但是仍然不能萃取出好质量的 RNA,那或许我 们就必须检视我们的实验设计是否会导致 RNA 降 解机制的活化,例如: 细胞正在经历细胞凋亡或组 织坏死的生理反应 ; 或者处理的药物会直接引起 RNA 降解等,如果是那可能就要作实验设计修正 或下修对 RNA 质量的要求。
以上的一些操作 RNA 萃取的技巧,是华联基因 体实验室多年来操作过上万个各式各样 RNA 检体 的实战经验,所累积出来的ㄧ些心得,对一些经 验丰富的读者来说或许是野人献曝了。
但是希望这样的经验分享能帮助那些在 RNA 的备制上遭遇到困难的客户们,能顺利完成 RNA 检体的准备工 作,实验室本着使命必达的精神,认真的对待每一个交付到我们手上的样本,会用最快的速度作 出最完美的结果送到委托客户的手上。
如果说以 上的内容有不详尽或不清楚的地方,欢迎随时和 华联实验室联络讨论或经验交流,我们定会全力以赴。