PCR及RT-PCR之基础问题解答

RT-PCR灵敏度：在琼脂糖凝胶分析中看到少量或没有RT-PCR产物。

可能原因：

1、RNA被降解

建议解决方法

在用来验证完整性之前先在变性胶上分析RNA使用良好的无污染技术分离RNA；

在将组织从动物体取出后立刻处理在100％甲酰胺中储存RNA；

如果使用胎盘RNase抑制剂，不要加热超过45℃或pH超过8.0，否则抑制剂或释放所有结合的RNase.而且，在≥0.8mM DTT时加入RNase抑制剂，一定要存在DTT.

2、RNA中包含逆转录抑制剂

建议解决方法：

通过乙醇沉淀RNA除去抑制剂。用70％（v/v）乙醇对RNA沉淀进行清洗。可以加入糖元（0.25μg到0.4μg/μl）以帮助小量样品RNA的恢复。

逆转录抑制剂包括：SDS，EDTA，甘油，焦磷酸钠，spermidine，甲酰胺和胍盐。

将对照RNA同样品混合，同对照RNA反应比较产量以检验抑制剂。

3、多糖同RNA共沉淀

建议解决方法：

使用氯化锂沉淀RNA以除去多糖。

4、用于合成cDNA第一链合成的引物没有很好退火

建议解决方法：

确定退火温度适合您的引物。对于随机六聚体，建议在反应温度保温之前先在25℃保温10分钟。

对于基因特异性引物（GSP），可以试一下其他GSP，或换用oligo(dT)或随机六聚体。

确定GSP是反义序列。

5、起始RNA量不够

建议解决方法：

增加RNA量。

对于＜50ng的RNA样品，可以在第一链cDNA合成中使用0.1μg到0.5μg乙酰BSA.

6、RNA模板二级结构太多

建议解决方法：

将RNA和引物在不含盐及缓冲液条件下变性/退火。

提高逆转录反应温度，对SuperScriptⅡ可以到50℃，对ThermoScript可以到65℃。

注意：不要在＞60℃时使用oligo(dT)引物，选择一个在反应温度可以退火的GSP.对于＞1kb的RT-PCR产物，保持反应温度≤65℃。

注意：不要在高于37℃时使用M-MLV。

如果不需要全长cDNA，在第一链反应中使用随机引物。

7、引物或模板对残余的RNA模板敏感

建议解决方法：

在PCR前用RNaseH处理。

8、靶序列在分析的组织中不表达

建议解决方法：

尝试其他靶序列或组织

9、PCR没有起作用

建议解决方法：

对两步法RT-PCR，不要在PCR步骤中使用超过1/5的逆转录反应产物。

可能原因：

1、PCR引物设计较差

建议解决方法：

避免在引物3'端含有互补序列。避免可以形成内部发卡结构的序列。设计Tm类似的引物。

2、DNA含有抑制剂

建议解决方法：

诸如DMSO，SDS和甲酰胺之类的试剂会抑制Taq DNA聚合酶。如果怀疑污染了抑制剂，可以使用乙醇沉淀DNA.

3、富含GC的模板

建议解决方法：

对于GC含量＞50％的模板，使用PCRx Enhancer Solution.

4、模板浓度太低

建议解决方法：

使用104拷贝的靶序列，以在25到30个循环中获得信号。

5、镁离子浓度太低

建议解决方法：

从1mM到3mM，间隔0.5mM进行一系列反应，确定对于每个模板和引物对的最佳镁离子浓度。注意：对实时定量PCR，使用3mM到5mM的镁离子浓度。

6、退火温度太高

建议解决方法：

使用表4的公式估算Tm，把退火温度设定为低于Tm 5℃。因为这些公式只是估算Tm值，所有真正的退火温度实际会高些或低些。

7、引物浓度太低

建议解决方法：

最佳引物浓度介于0.1μM到0.5μM之间。为了精确确定引物浓度，在260nm测量光密度，然后使用光吸收值和消光系数计算浓度。