简介
细胞膜是细胞与外环境进行物质交换的屏障，是一种半透膜，即可选择性地控制物质进出细胞。
原理
细胞膜通透性测定实验的基本原理是若将红细胞置于低渗溶液中，由于细胞内的溶质浓度高于细胞外，所以液体很快进入细胞内，使胞膜胀破，血红蛋白逸出，即发生溶血。若将红细胞置于各种等渗溶液中，红细胞膜对各种溶质分子的通透性不同，有的溶质分子可透入，有的则不能透入；即使能透入，速度也各有差异。因此，当易透入的溶质分子进入红细胞，随胞内溶质分子浓度增加，导致水分摄入，红细胞膨胀，细胞膜最终破裂出现溶血。此时，光线较容易通过溶液，原为不透明的红细胞悬液突然变成红色透明的血红蛋白溶液。根据溶质透入的速度不同，溶血时间也不同。因此，可通过测量溶血时间来估计细胞膜对各种物质通透性的大小。
材料与仪器
器材：
试管、试管架、记号笔、滴管、载片、盖片、镊子、滤纸、显微镜。
试剂：
① 10％ 羊红细胞悬液（取 10 ml 小鼠血加入到 90 ml 生理盐水中混匀）
② 兔红细胞悬液或小鼠红细胞悬液
③ 蒸馏水
④ 0.17 mol/L NaCl 溶液
⑤ 0.17 mol/L NH4Cl 溶液
⑥ 0.32 mol/L 葡萄糖溶液
⑦ 0.32 mol/L 甘油
⑧ 0.8 mol/L 甲醇溶液
⑨ 0.8mol/L 丙三醇溶液
⑩ 氯仿
⑪ M-缓冲液（咪唑（Imidazole），3.404 g；KCl，3.7 g；MgCl2▪6 H2O，101.65 mg；ECTA，380.35 mg；EDTA，29.224 mg；巯基乙醇，0.07 ml；甘油，297 ml；蒸馏水，加至 1000 ml。用 1mol/L HC1 调 pH 至 7.2，室温保存）
⑫2 ％Triton X - 100 溶液（量取 2 ml Triton X-100（聚乙二醇辛基苯基醚）液，加 M-缓冲液 98 ml 即可。）
步骤
细胞膜通透性测定实验的基本过程可分为如下几步：
A 轻轻振摇一下盛有制备好的羊血红细胞悬液的试管，观察悬液的特点，为一种不透明的红色液体。
B 观察红细胞在低渗溶液中发生的溶血现象 在 1 只试管中加入 0.3 ml 红细胞悬液，再加入 3 ml 蒸馏水，轻轻摇匀，注意观察溶液颜色的变化。可见溶液由不透明的红色（隔着它不能看到试管后面纸上的字）变成红色澄清液（此时可清楚看到纸上的字），即已发生溶血。记录好时间。
C 测定红细胞对各种物质的选择通透性 取 8 只试管，分别加入 0.17 mol/L 氯化钠溶液、0.17 mol/L 氯化铵溶液、0.32 mol/L 葡萄糖溶液、0.32 mol/L 甘油、0.8 mol/L 甲醇溶液、0.8 mol/L 丙三醇溶液、氯仿、2% Triton X-100 溶液各 3 ml，作出标记后，各管均加人红细胞悬液 2 滴，混匀后静置于室温中。
注意事项
试管要根据实验所要装的溶液种类来编号，吸管也要对应编号，切勿混淆，以保证实验结果的准确性。
来源：丁香实验
