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从包含体中溶解大肠杆菌重组蛋白实验基本方案

相关实验:从包含体中溶解大肠杆菌重组蛋白实验

最新修订时间:

原理

分子克隆技术能够使细菌高水平表达蛋白,因此原核表达是一个非常便利的获得重组蛋白的系统。遗憾的是这些蛋白在细菌中易于聚合和沉淀,形成难溶解的包含体,因而很难纯化。非细菌蛋白的包含体尤其普遍。虽然没有一种可用于所有蛋白的普适方法,还是有许多策略适用于包含体蛋白的溶解。本方案描述的就是这些策略之一。溶解包含体蛋白时要考虑许多步骤:


①细胞裂解;


②包含体的分离;


③洗涤包含体;


④溶解包含体;


⑤重组蛋白的复性(假如需要)。

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材料与仪器

表达目标重组蛋白的细菌细胞
复性缓冲液 溶解缓冲液 洗涤缓冲液
离心机

步骤


①如实验方案6所述裂解细胞。


②4℃条件下23000g离心细胞裂解液30min。


③倒出上清,测定沉淀的湿重。


④用约10倍体积的洗涤缓冲液重悬沉淀,室温搅动悬浮液1h。


⑤4℃条件下23000g离心混合物30min。


⑥除去上清,并重悬沉淀。


⑦重复④〜⑥步骤3次以上(直到重组蛋白的纯度>80%)。


⑧溶解步骤⑦的沉淀物,每克湿重沉淀(由步骤③决定)加入约8ml的溶解缓冲液,在4℃条件下温和搅动混合物16〜20min。


实验提示:蛋白浓度不要超过2〜3mg/ml其他的溶解缓冲液:


a.8mol/L盐酸胍,10mmol/L DTT,50mmol/L Tris-Cl(pH8.5)


每12〜15g湿重的收集细胞用15ml溶液溶解。37℃孵育混合物1h。如步骤⑨a.所述变性蛋白。


b.8mol/L脲素,2mmol/L还原型谷胱甘肽/0.2mmol/L氧化型谷胱甘肽。


每克湿重包含体沉淀使用9倍体积的缓冲液。室温孵育混合物1h。蛋白浓度不要超过2.5mg/ml。如步骤⑨,b.所述复性蛋白。


⑨特定目的蛋白的重新折叠所需的最适条件必须通过预实验来选择。复性条件包括:


a.用1.5μmol/L硫酸铜、50mmol/L Tris-Cl(pH8.5)溶液将可溶性沉淀稀释25倍,至终浓度为0.04mol/L DTT、0.24mol/L盐酸胍和约1.4μg/ml的目的蛋白。20℃孵育混合物2h。


b.缓慢将9倍体积的50mmol/L磷酸盐、50mmol/L NaCl和1mmol/L EDTA(含2mmol/L还原型谷胱甘肽/0.2mmol/L氧化型谷胱甘肽)加入溶解的沉淀中。25℃孵育混合物2〜4h。


⑩用适合于目的蛋白的浓缩步骤来回收重折叠的蛋白(如RP-HPLC、冻干或超过滤)。

注意事项

洗涤缓冲液:


100mmol/L Tris-Cl(pH8.0)


2〜4.0mol/L脲


1%(体积分数)TritonX-100

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常见问题

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来源:丁香实验

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