糖原染色

糖原由多糖衍化而来，是单纯的多糖。糖原易溶于水，所以用特殊的 Carnoy 固定液或无水乙醇直接固定才能较好地保存糖原，常用高碘酸（periodic acid）-Shiff 反应（PAS）染色法。

高碘酸氧化液：高碘酸 0.5 g，蒸馏水 100 ml。此液溶解后放入冰箱中待用。

Schiff 染色液：碱性复红 1 g，1mol/L 盐酸 20 ml，焦亚硫酸钠（偏重亚硫酸钠）2 g，双重蒸馏水 200 ml。先将 200 ml 双重蒸馏水煮沸，稍有火焰，加入 1 g 碱性复红，再煮沸 1 min，冷却至 50℃ 加入 20 ml1mol/L 盐酸，待 35℃ 时加入 2 g 焦亚硫酸钠。室温中 2 h 之后见稍带红色，5 h 之后变为无色液体。棕色瓶内装好，放入冰箱中保存待用。

1. 石蜡组织切片，常规脱蜡至水。

2. 蒸馏水洗 2 次。

3. 高碘酸氧化液处理 10～20 min。

4. 充分蒸馏水洗。

5. Shciff 液染色，染色 10～20 min（如果室温在 15℃ 以下时，可在湿盒内加入温水而加快反应）。

6. 流水冲洗 3 min（对于着色较深的切片可适当缩短时间）。

7. 用 Mayer 明矾-苏木精液染细胞核 3～5 min。

8. 0.5％ 盐酸乙醇液分化 30s，自来水浸洗 2 min。

9. 无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。

1. 糖原固定必须及时取小块组织进行固定，防止固定不透或不均现象。

2. Schiff 试剂使用时的吸管要清洁，当室温较低需加热时，要注意染色不能较深，防止影响染色效果。

结果：糖原物质呈红色，细胞核呈蓝色。