原理
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糖原由多糖衍化而来，是单纯的多糖。糖原易溶于水，所以用特殊的 Carnoy 固定液或无水乙醇直接固定才能较好地保存糖原，常用高碘酸（periodic acid）-Shiff 反应（PAS）染色法。
材料与仪器
石蜡组织切片
高碘酸 蒸馏水 碱性复红 盐酸 焦亚硫酸钠（偏重亚硫酸钠） 双重蒸馏水 Mayer 明矾-苏木精液 乙醇 二甲苯 中性树胶
高碘酸 蒸馏水 碱性复红 盐酸 焦亚硫酸钠（偏重亚硫酸钠） 双重蒸馏水 Mayer 明矾-苏木精液 乙醇 二甲苯 中性树胶
步骤
高碘酸氧化液：高碘酸 0.5 g，蒸馏水 100 ml。此液溶解后放入冰箱中待用。
Schiff 染色液：碱性复红 1 g，1mol/L 盐酸 20 ml，焦亚硫酸钠（偏重亚硫酸钠）2 g，双重蒸馏水 200 ml。先将 200 ml 双重蒸馏水煮沸，稍有火焰，加入 1 g 碱性复红，再煮沸 1 min，冷却至 50℃ 加入 20 ml1mol/L 盐酸，待 35℃ 时加入 2 g 焦亚硫酸钠。室温中 2 h 之后见稍带红色，5 h 之后变为无色液体。棕色瓶内装好，放入冰箱中保存待用。
1. 石蜡组织切片，常规脱蜡至水。
2. 蒸馏水洗 2 次。
3. 高碘酸氧化液处理 10～20 min。
4. 充分蒸馏水洗。
5. Shciff 液染色，染色 10～20 min（如果室温在 15℃ 以下时，可在湿盒内加入温水而加快反应）。
6. 流水冲洗 3 min（对于着色较深的切片可适当缩短时间）。
7. 用 Mayer 明矾-苏木精液染细胞核 3～5 min。
8. 0.5％ 盐酸乙醇液分化 30s，自来水浸洗 2 min。
9. 无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。
<link />注意事项
1. 糖原固定必须及时取小块组织进行固定，防止固定不透或不均现象。
2. Schiff 试剂使用时的吸管要清洁，当室温较低需加热时，要注意染色不能较深，防止影响染色效果。
<link />常见问题
结果：糖原物质呈红色，细胞核呈蓝色。
<link />来源：丁香实验
