原理
材料与仪器
吉姆萨染色液(Fisher) 710 mmol L磷酸钠缓冲液 pH 6.8 (500 mmol L原液按1:50稀释) 50%、70%、95% 和100% 乙醇、二甲苯 封片介质为Permount (Fisher)或 Gelvatol (现称 Airvol 来自Air Productsand Chemicals)
玻璃染色盘 13个平头镊 Whatman 3 MM 滤纸条 42℃温箱
步骤
1) 将显影的玻片置于玻片架上,浸入盛有水的染色盘中。
2) 在染色盘中,准备以下各组液体:
1个盘:用pH 6.8 10 mmol/L磷酸钠缓冲液配制的25倍稀释的吉姆萨染液;
3个盘:水。
脱水系列溶液(可重复使用):
3个盘:分别盛50%、70%和95%乙醇;2个盘:盛有100%乙醇;
3个盘:盛有二甲苯。
3) 在25倍稀释的吉姆萨染液中染玻片20 s (依染色时间决定染色的强弱)。将玻片在水中浸泡3次,每次2 min。
4) 用乙醇系列溶液脱水,每盘中浸泡2 mm,将玻片移至二甲苯盘中,每次浸泡2 min,共 3 次。应注意进行脱水和在二甲苯中平衡的操作,因Permoimt不与水或乙醇相溶。
5) 在通风橱中,按如下操作压片固定:用一平头镊(拿在左手),从二甲苯中取出一块玻片,夹住磨面端置水平。加4滴Permmmt于另一端(切片所处位置),右手拿一干净的盖玻片,很缓慢地放在载玻片上。在加压片固定介质和盖玻片前,勿使玻片变干,因微小气泡会造成入为假象。
如用Gelvatol,对切片无需进行脱水处理。例如,在免疫组化试验中。以Gelvatol进行压片固定 按如下进行:滴1小滴Gelvatol于盖玻片上,小心将载玻片贴于液滴上,防止产生气泡。避免施压,否则可能压坏样本,室温下放2〜4 h使之凝固。
6) 用3 MM滤纸,沿盖玻片边缘,小心吸去多余封片介质/二甲苯,并擦拭载玻片背面(勿擦拭盖玻片)。勿将玻片直立存放于玻片中,因此时封片介质尚未凝固。
7) 将玻片平放于一硬纸盘上,置42℃温孵箱2天使之凝固。
8) 以剃须刀片小心刮去载玻片背面残留胶乳、染料和封片介质。用镜头纸或普通棉纸 擦去尘埃。放入玻片盒,必要时,在载玻片上再注明标签。
9) 显微镜观察玻片,观察时可依信号强弱调节光亮。
来源:丁香实验