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干细胞与皮肤组织工程

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

干细胞与皮肤组织工程

皮 肤 细 胞 培 养

试 剂 材 料

9 . 3 . 1 . 1 试 剂 材 料 (1)成纤维细胞培养基: 1 0 % 小牛血清; D M E M ; 100U /m l 青霉素; 100U /m l 链霉素。 ⑵角质形成细胞有血清培养基: D M E M 与 H a m F l 2 的混合培养基(按3 : 1 的体积 比例混合); 1 0 % 新生小牛血清; 4mmol/L L -谷氨酰胺; 0.4明/m l 氢化可的松; K T 1Gm 〇l/L 霍乱毒素; 5咫/m l 转铁蛋白; O x l O ^ mol/L 腺嘌呤; 2X K r 11XndyL三碘甲状腺原氨酸; 5昭/m l 胰岛素; lOng/m l 表皮生长因子(E G F ); 100U /m l 青霉素; 100U /m I 链霉素。 (3) 角质形成细胞无血清培养基 : MCDB1 5 3 无血清培养基; 0.15ng/m l表皮生长因 子 ; 25略/m l 牛垂体提取物。 (4)消化酶液: Dispase酶 液 (浓 度 2m g /m l ,成纤维细胞培养基配制);胰蛋白酶液 (0.25%,含 0.02% EDTA,无钙镁离子PBS配制)。 • 281 . (5)黑色素细胞培养基有两种: a.M C D B 153无血清培养基; 4 % 胎牛血清; 0.5|iig/m l 转铁蛋白; 5略/m l 胰岛素; 100U /m l 青霉素; 100U /m I 链霉素;0.6ng/m l 碱性成纤维细胞生长因子; 17ng/ml a-黑色素细胞刺激素; 2.5ng/m l 内皮素-I; lpg/m l 维 生 素 E 。 b. M C D B 153 无血清培养基; 2mmol/LCaCl2; Leibovitz’s L -15 以 4: I(W V )比例 添加;2 % 胎牛血清;5|ig/m l 胰岛素;5ng/m l 表皮生长因子;lOng/ml T P A ;40^ig/ml 牛垂体提取液

成 纤 维 细 胞 的 分 离 培 养

成纤维细胞体外培养技术已经很成熟。常用培养方法有组织块贴瓶法和酶消化法。组织块贴瓶法进行原代培养时是把小的皮肤块植于培养瓶 (皿) 壁上,当组织周边沿生的细胞相互接触形成单层时,消化这些细胞后获得原代细胞;酶消化培养法是先用消化酶如胶原酶、胰蛋白酶等对组织进行消化后获得单细胞悬液,然后接种获得原代细胞。组织块培养难以贴瓶,轻微振动会使组织块不易贴壁,培养基的波动作用也会影响组织块培养。下面我们介绍成纤维细胞的酶消化培养法。

(1) 取人环切包皮,去除皮下组织,乙醇消毒,用 P B S 漂洗几次。
(2) 置 于 0.5% Dispase蛋白酶中或者0.25%胰蛋白酶/0.02% E D T A 溶液的小瓶中, 于 4T :消化过夜。 (3) 以镊子剥除表皮层,将分离的真皮组织充分剪碎,加入〇.1 % 胶原酶溶液,于 37SC 消 化 8~10h 。 ⑷ 用 吸 管 反 复 吹 打 组 织 块 ,分 散 细 胞 。 细胞悬液经1〇〇目筛网过滤,离心 (800gxl0min) 〇 (5) 用 含 1 0 % 小牛血清的D M E M 培养液重悬细胞,计 数 ,按 5xl05个/c m 2密度种入 培养瓶,置于培养箱(37T :、 5 % C 0 2)。 (6) 培 养 24h 后更换培养液。此 后 每 2〜 3 天换液一次。
(6) 将表皮用胰蛋白酶液37T 快速振荡消化lmin,随后加入含10% F B S 的 D M E M 终止消化。 . (7) 用灭菌的纱布过滤去处组织块,细 胞 液 300g 离 心 5min。 (8) 用角质形成细胞培养液重悬沉淀细胞,以 2x l04〜 5x l04个/cm2密度种植于饲养层 细胞上。 3) 角质形成细胞的常规培养 (1) 每周换液2 次 ,原代培养1〇 ~14天后将会达到70%~80%的融合。 (2) 将细胞孵育在胰蛋白酶和EDTA消化液中, 37丈 消 化 10~15min,随后用力吹打 使细胞从培养瓶脱离下来。 (3) 离心、漂洗、计 数 ,再 以 5x l03~50x l03个/c m 2密度种植于新鲜的伺养层上。 4 ) 角质形成细胞的鉴定 角质形成细胞具有很强的集落克隆形成能力,培 养 3 天后即可形成集落, 10天左右 即可汇合成片。角 蛋 白 1 9 和 P6 3 转录因子可以作为角质形成细胞的表面标志对其进行免 疫细胞化学鉴定。角质形成细胞培养的角质形成细胞可能含有成纤维细胞,可用波形蛋 白(Vimentin,中胚层来源细胞的标志)和角质细胞生长因子(keratinocyte grow factor,K G F ) 来检测。成纤维细胞表达Vimentin和 K G F , 而角质形成细胞不表达K G F 。

角 质 形 成 细 胞 的 分 离 培 养 (Medalie et al. 1999, Boyce et al. 1999)


1) 饲养层细胞的处理 3T 3 或者成纤维细胞的处理向对数生长期的3T 3 细胞或者成纤维细胞内加入丝裂霉 素 C (l~10pg/ml), 37T 下 培 养 牝 后 ,弃掉培养液,用 P B S 洗 3 次 ,经 0.25%胰蛋白酶 消化后,分离出细胞,用血球计数板计数,接种于含有角质形成细胞培养基的培养皿内 接种密度为2xl〇4〜 5xl04个/c m 2。 2) 角质形成细胞的原代培养 ⑴外科切取儿童包皮或者干尸皮肤,用乙醇消毒,晾干。 (2) 分离皮肤和皮下组织,去除脂肪和疏松结缔组织。 (3) 用手术刀将皮肤切成1〜 2 c m 长的细薄条。 ⑷ 加 人 Dispase消化液,在 代 下 过 夜 或 37T 下消 化 2〜 4h 。 ( 5 ) 肉眼可见皮肤边缘表皮发生分离时,将表皮 面 向 下 ,小心地将表皮与真皮剥 离 开

黑 色 素 细 胞 的 分 离 培 养 (Hsuet al. 1996)


(1) 用前面同样方法将表皮与真皮分离。

(2) 收集表皮, 0.25% 胰 酶 消 化 lOmin,反复吹打以获得单细胞悬液

(3) 用角质形成细胞培养基接种培养 3 天 ,然后将培养液更换为黑色素细胞培养液。

⑷ 每 2〜 3 天换液一次。原代细胞长满 7 0 % 〜 8 0 % 时 ,胰酶消化传代。

黑 色 素 细 胞 的 鉴 定

一般培养 2 天后即可看见黑色素细胞,细胞呈梭形或多角形,呈现树突状,随着生长更为明显。

黑色素细胞能够产生黑色素,多巴胺染色可见细胞质内呈现黑色或灰色颗粒,透射电镜观察也可看见细胞质内有黑色素颗粒。

皮 肤 组 织 工 程 支 架 材 料

皮肤目前常用的支架材料主要有以下几种:成纤维细胞等饲养层细胞;聚乌拉坦、聚乳酸等合成材料;胶原、透明质酸、纤维蛋白胶等细胞外基质;脱细胞真皮等。脱细胞真皮已经商业化,如 AlloDerm、 Integra 等 。脱细胞真皮有多种制备方法,下面介绍一下常用脱细胞真皮的制作方法。

冻 融 法 制 作 脱 细 胞 真 皮

1 ) 方法一
(1) 将前面所述分离的真皮切成大小适中的小块(2) 将真皮块放入液氮中冷冻,随后取出复温。 (3) 如此在-80^:和 3 7 ¾ 下反复冻融4〜 10次后(目的是去除存活的细胞成分,剩下 是一个以胶原纤维网架为主的真皮组织), 再放入- 8 0 1 下冷冻保存。 2 ) 方法二 (1) 用采皮机采尸体皮肤或新鲜皮肤,置于消毒的容器中冻存备用。 (2) 制备去细胞真皮时将冷冻皮取出,复温,再入液氮冷冻。 (3) 如此接连几个冻融过程,然后用灭菌的P B S 洗漆几次,再用含有多种抗生素 S 于 37^孵箱中孵育一周。 (4) 一周后取出冷冻皮,用镊子将表皮从真皮上轻轻剥离或刮去,余下未去除的表 会在随后一周左右的时间自然脱去。 (5) 将真皮放人含有多种抗生素的P B S 中 于 4 1 放 置 4 周或更长的时间以去除可 有的存活细胞。 (6) 使用前,脱细胞真皮用D M E M 洗 涤 3 次 。

化 学 试 剂 消 化 酶 混 合 法 制 作 脱 细 胞 真 皮 (杨 志 明 2002)

9 . 3 . 2 . 2 化 学 试 剂 消 化 酶 混 合 法 制 作 脱 细 胞 真 皮 (杨 志 明 2002) 1 ) 试剂 0.5% SDS(含有 0.02% NaN3)、 lmol/L NaCl(含有 0.02% NaN3)、 0.1%戊二醛、 0.25% 胰蛋白酶溶液、 P B S 溶液(含有l〇〇U /ml 青霉素、 100|ig/ml 链霉素、 lOO^ig/m l 庆大霉素、 10|ig/m l 环丙沙星和2.5吨/m l两性霉素)。 2 ) 制备 (1) 皮肤来源同前。 (2) 将皮肤用加入多种抗生素的P B S 溶液清洗干净,切成大小适中的小块,浸 于 37 NaCl溶液中(溶液与皮肤体积比比例为100 : 丨 ),振 荡 24h。 (3) 将脱表皮皮肤浸泡于0.1%戊二醛中交联5〜 l〇min,用 P B S 冲洗干净。随后将 浸 泡 于 0.5% S D S 溶液中,连 续 摇 动 l〜 2h ,用 P B S 溶液冲洗干净。 ⑷ 0.2%胰蛋白酶溶液中消化 3 0 m i n , P B s 溶液冲洗。 ⑶ 冷 冻 干 燥 后 可 代 保 存 。

复合皮肤构建 (鄂征等 2003, M e d a l i e e t a l.1999)

角 质 形 成 细 胞 -脱 细 胞 真 皮 皮 肤 的 构 建

(1) 将脱细胞真皮放入组织培养皿中,真皮乳头面朝上,加入少量培养液, 37℃ 培养 Ih

(2) 将角质形成细胞用胰蛋白酶消化离心,洗涤后轻轻滴种于真皮块上, 37℃; 孵育2 h 使细胞贴壁,随后加入培养基浸没角质形成细胞_脱细胞真皮复合物。此 后 每 3 天换液一次。

(3) 浸没培养角质形成细胞-脱细胞真皮复合物 3 天后,用玻璃器具或其他无菌不锈钢器具:将复合物轻轻托起,离开培养皿底。慢慢加入新鲜培养液,以和复合物表面平齐不超过为准,将角质形成细胞层暴露于空气中,形成气_液培养界面层。

(4) 如 此 培 养 至 少 1 周 ,将会在真皮乳头面上形成一个具有多层角质形成细胞的上皮膜。此复合皮肤可以进行动物移植。

角 质 形 成 细 胞 _黑 色 素 细 胞 - 真 皮 替 代 物 复 合 皮 肤 的 构 建

真皮替代物现在种类比较多,例如,聚乳聚羟基乙酸共聚物 (P L G A )、胶原凝胶、胶原-黏多糖海绵和胶原冻干膜等。我们以胶原为例介绍复合皮肤的构建。真皮替代物现在种类比较多,例如,聚乳聚羟基乙酸共聚物(P L G A )、胶原凝胶、胶 原-黏多糖海绵和胶原冻干膜等。我们以胶原为例介绍复合皮肤的构建。 (1) 胶原凝胶的制备:在无菌条件下,用乙酸溶液按8g/L 的浓度配制胶原,并加入 血 清 和 lOxDMEM,用 lm ol/L的 NaOH调节的胶原的pH 至 7.2,冰块保存备用。 (2) 成 纤 维 细 胞 达 80%~90%汇 合 生 长 时 以 0.25%胰酶溶液消化,按 2xl05个/cm2密 度种于培养板中的胶原膜上。加入成纤维细胞培养液于3 7 ^ 、 5 % C 0 2 条件下继续培养 4 天。 (3) 将胶原膜反转,在胶原膜的另一面以2~3倍成纤维细胞密度将角质形成细胞和 黑色素细胞悬液(比例为30: 1)接种于上,换成角质形成细胞培养液进行培养。 (4) 继续培养 3 天 ,将细胞胶原复合体进行气-液界面培养,隔日更换培养液,培养 14~17天后即可用于移植实验

动 物 移 植 试 验

(I) BALB/c 裸 鼠 , 2 % 戊巴比妥钠 (30〜 50 mg/kg) 腹腔注射麻醉

⑵ 7 0 % 乙醇擦洗鼠背,随后再用聚维酮碘 (Betadine) 消毒。

(3) 在裸鼠背部切取全层皮作圆形创面 (区域要小于待移植的复合皮肤) 以供皮肤移植。

(4) 取上述组织工程化的复合皮肤,覆盖创面,用 6-0 线缝合,加压包扎。

(5) 移 植 6 周后基本上已能长出完全分化、具有色素上皮和表皮基底层的皮肤组织来。

来源:丁香实验

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