原理
此方案是在对 Neuhoff 等的方法进行修订的基础上建立的(1988),包括考马斯亮蓝 G250 和蛋白质的结合。考马斯亮蓝 G250 可以结合碱性氨基酸如精氨酸、酪氨酸、赖氨酸和组氨酸,染料的胶体特性使产生的背景非常低。这一特性可以阻止考马斯亮蓝渗透凝胶,避免考马斯亮蓝 R250 染色时较长的脱色过程。胶体考马斯亮蓝通常用于染色凝胶,检测范围为 8~50ng。
材料与仪器
包含蛋白质样品的凝胶
考马斯亮蓝 染料储备溶液 固定液 甘油 甲醇
玻璃平皿或塑料平皿 往复式或定轨式摇床
考马斯亮蓝 染料储备溶液 固定液 甘油 甲醇
玻璃平皿或塑料平皿 往复式或定轨式摇床
步骤
1.将凝胶置于玻璃或塑料培养皿中固定,轻轻摇动至少 1h。
可将凝胶固定过夜。如果凝胶有标记,多个凝胶可在同一培养皿中固定,固定液的体积应足够大,以使所有凝胶都能自由移动。
2.移走固定液,在摇床上用水清洗凝胶 10 min。
3.弃去水,重复洗 2 次。
4.在洗第三次时,将 4 份考马斯亮蓝储备液和 1 份甲醇混合,以制备胶体考马斯亮蓝染液。
5.将凝胶放在 100~300 ml 胶体考马斯染料内(染料的体积依胶的大小而定,确保染料覆盖凝胶)。在往复式或定轨式摇床上,轻摇过夜。
凝胶应在染料中放置足够长时间,其颜色会持续加深一直到第七天。
6.去除残留染料,将凝胶转移至盛有 45~55°C 双蒸水或去离子水的干净平皿中。
当水变色时弃去,再次用新的 45~55℃的 H2O 轻轻摇晃清洗凝胶。重复几次,直到蛋白质带较凝胶背景变得明显,蛋白质将在清晰的背景上出现蓝色。
7.凝胶可用于扫描分析。扫描湿凝胶较好,因为若凝胶干燥易破裂,导致数据的丢失。
8.在干燥之前,将凝胶浸在 5% 甘油中 30 min,凝胶也可装在密封塑料袋内,储存于 4°C。
来源:丁香实验