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组织消化法

相关实验:干细胞的分离纯化实验

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

组织消化法

实验材料及试剂

①眼科弯剪、组织镊、筛网 (200 目);②培养皿、培养瓶、离心管、吸管;③ D-Hank缓冲液高压灭菌, 4℃:保 存 ;④胰蛋白酶或胶原酶;⑤完全培养基;⑥实验动物。

操作方法

(1) 将组织块置于无菌培养皿中,用 H a n k 缓冲液或无血清培养液漂洗,洗去血污,对于内脏组织要剥去外包膜。

(2) 用眼科弯剪将组织剪成 1〜 2m m 3 左右的小块。在剪切过程中,可以适当向组织上滴加少许培养液,以保持组织块的湿润。

(3) 根据组织的不同加入相应浓度的消化液,置于最佳消化条件下对组织进行消化处理。要注意在消化过程中要随时吸取少量消化液置于显微镜下观察,如组织已经分散成细胞团或单个细胞就要终止消化。

(4) 将 消 化 液 过 2 0 0 目筛网,以去除组织块。剩余的大块组织可继续加人新鲜的消化液继续消化,以获得足量的目的细胞。

⑶将已过滤的消化液置于离心管中,离心后,加入适量的 D -H a n k 缓冲液或培养基重悬细胞,充分打散为单个细胞悬液,洗一二次后,细胞计数,接种于培养瓶或培养皿中,置 5 % C 0 2、 37¾ 培养箱中进行培养。

注意事项

不同的器官、组 织 ,其组织胚胎学结构不一,例如,心肌细胞或平滑肌细胞如采用剪切的方法则容易将细胞损伤,在此情况下则需采用剥离加酶消化的方法。

来源:丁香实验

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