材料与仪器
步骤
密 度 梯 度 离 心 法
试 剂 配 制
(1) 淋 巴 细 胞 分 层 液 :有成品供应,密度为 (1.077±0.001)g/ml。
(2) 台盼蓝染液:见 附 录 2。
操 作 方 法
(1) 取血放入抗凝管,摇匀,用 pH7.2——7.6 的 Hank 缓冲液 (或磷酸盐缓冲液) 稀释血液 1——2 倍 。
⑵ 取 淋 巴 细 胞 分 层 液 3——4 ml,放 入 15 mmxl50m m 的试管中。
(3) 用毛细吸管吸取稀释血液,在离分层液面上 Icm 处 ,沿试管壁徐徐加入,使稀释血液量叠于分层液上,稀释血液与分层液体积比例约为 2: 1。
(4) 用水平离心机以 2000r/m in 离 心 30 min,离心后其中的内容物分为三层,上层为血浆 (内含血小板),中间层为分层液,底层为红细胞和多核白细胞。在上、中层液体界面处可见到乳白色混浊的单个核细胞层。
(5) 用毛细吸管轻轻插入到白膜层,沿试管壁周缘吸取界面层的单个核细胞 (图 1.1),移入另一试管中。
(6) 加 5 倍以上体积的不含 Ca2+ 、Mg2+的 Hank 缓冲液,混勻,1500r/min 离 心 lOmin,吸弃上清,重复洗涤 2 次 。
(7) 末次离心后,吸尽上清,用 含 10% 血清的培养基重新混悬细胞,取 1 滴细胞悬液计数。
(8) 细胞活力检测:取 IxlO6〜 2x l06 个细胞悬液加 i 滴 2% 台盼蓝染液混勻,加盖片,显微镜高倍镜检,活细胞不着色,折光强;死细胞被染成蓝色,体积略膨大。活细胞数应 在 9 5 % 以上。
注 意 事 项
(1)用稀释的全血可使单个核细胞获得率升高,将稀释的血液叠加于分层液上时,一定要细心,动作要轻,避免冲散分层液面或与分层液的混合而影响分离结果。
(2)配制单个核细胞悬液所用的培养液要求等渗、具缓冲作用并对细胞无毒性。
(3)吸取单个核细胞时,应避免吸出过多上清液或分层液而导致血小板污染
(4)配制好的单个核细胞可放室温或0-4℃,后一条件较好,可减少细胞代谢活动。注意不要迅速改变其所处的温度,以 免 造 成 「温度」休克。
备 注
大容量血液可先用甲基纤维素或羟乙基淀粉沉降后,再采用上述方法分离。
将稀释后的血液按 4 : 1 的比例与 0.5% 的甲基纤维素溶液混匀,室温沉降后,吸取上层细胞,离心后,可获得有核细胞,再 以 P B S 稀释,重复上述步骤
来源:丁香实验