原理
质粒克隆操作最费时间的步骤是用电泳的方法对预期大小的外源 DNA 片段和质粒 DNA 片段进行纯化,在以下的方案中(取自Struhl 1985),质粒和外源 DNA 的连接可在低熔点球脂糖存在的条件下完成。
材料与仪器
限制性内切核酸酶 外源 DNA 片段 质粒 DNA
Tris-Cl MgCl2 DTT ATP T4 噬菌体 DNA 连接酶
低熔点琼脂糖凝胶 恒温板 手提式长波紫外灯 水浴
Tris-Cl MgCl2 DTT ATP T4 噬菌体 DNA 连接酶
低熔点琼脂糖凝胶 恒温板 手提式长波紫外灯 水浴
步骤
一、材料
1. 酶和缓冲液
(1) 2X T4 噬菌体 DNA 连接酶反应混合物:
1 mol/L Tris-Cl ( pH 7.6 ) 1.0 ul,100 mmol/L MgCl2 2.0 ul,200 mmol/L DTT 1.0 ul,10 mmol/L ATP 1.0 ul,H2O 4.5 ul,T4 噬菌体 DNA 连接酶 1.0 Weiss 单位。
每个连接反应需 10 ul 体系。
每次应用前需新鲜配制,装于微量离心管中在冰中预冷,将反应混合物置于冰上备用。
(2) 限制性内切核酸酶
2. 凝胶
低熔点琼脂糖凝胶
3. 核酸和寡核苷酸
外源 DNA 片段,质粒 DNA ( ~100 ug/ml,经去磷酸化处理)
每次连接反应大约需要 100 ng 去磷酸化的 DNA。
4. 专用设备
可设置 70℃ 的恒温板,手提式长波紫外灯(302nm),可设置 16℃ 的水浴。
二、方法
1. 建立一个酶切反应体系(不超过 20 ul),用适当的限制酶消化一定量的靶 DNA,要求最后能获得 250 ng 的目的片段。
2. 用低熔点琼脂糖凝胶电泳分离 DNA 片段。
3. 长波紫外灯下检査凝胶中 DNA 的电泳情况,根据条带的荧光强度估计 DNA 的量,用洁净的手术刀片切下目的条带,尽可能少切琼脂糖(一般约为 40~50 ul)。各目的条带都留下少许在凝胶中不要切,用于照相中表示各条带在凝胶电泳中的位置。
4. 将切下的凝胶片分别装入已做好标记的微量离心管中。
也可以将切下的凝胶片装在密封的微量离心管中于 4℃ 保存几天。
5. 离心管置于 70℃ 恒温块 15 min 以熔化凝胶条,确定离心管中凝胶的体积并计算含有约 200 ng DNA 所需的体积。
这样做的目的是用 10 ul 或更小的体积收取 200 ng 量的 DNA。这要取决于实际情况。对于含量低于 10 的条带(在凝胶中刚好可见),连接仍可进行,尽管连接效率较低。
6. 预热一个无菌的微量离心管至 37℃ 立即加入下列成分:
去磷酸化质粒 DNA 60 fmol,外源 DNA 片段 120~240 fmol(不超过 10 ul 体积)。
用一个无菌一次性吸头快速混匀上述混合物,避免琼脂糖凝胶凝固。
在连接反应中,外源 DNA 片段与质粒载体的摩尔比一般在 2:1~4:1 之间。
7. 给每一个反应管相应地做两个对照,一个只加去磷酸化质粒载体,另一个只加外源 DNA 片段。
8. 上述的反应管置于 37℃ 温育 5~10 min,而后每管加入现冷的 10 ul 2X T4 噬菌体连接酶反应混合物。用一个无菌一次性吸头快速混匀上述混合物,避免琼脂糖凝胶凝固。16℃ 温育 12~16 h。
上述的连接产物可直接用于转化大肠杆菌或电泳。在做转化或电穿孔转化之前,装连接产物的微量离心管需预先于 70℃ 加热 10~15 min 以重新熔解已凝固的凝胶。
习惯上,1~5 ul 连接产物可以用来转化化学方法制备的感受态细胞、而用更为有效的电穿孔转化法则只需 0.1~1.0 ul 的连接产物。采用更大体积进行电穿孔转化会增加溶质的浓度,以至使弧光的发生难以预测。
1. 酶和缓冲液
(1) 2X T4 噬菌体 DNA 连接酶反应混合物:
1 mol/L Tris-Cl ( pH 7.6 ) 1.0 ul,100 mmol/L MgCl2 2.0 ul,200 mmol/L DTT 1.0 ul,10 mmol/L ATP 1.0 ul,H2O 4.5 ul,T4 噬菌体 DNA 连接酶 1.0 Weiss 单位。
每个连接反应需 10 ul 体系。
每次应用前需新鲜配制,装于微量离心管中在冰中预冷,将反应混合物置于冰上备用。
(2) 限制性内切核酸酶
2. 凝胶
低熔点琼脂糖凝胶
3. 核酸和寡核苷酸
外源 DNA 片段,质粒 DNA ( ~100 ug/ml,经去磷酸化处理)
每次连接反应大约需要 100 ng 去磷酸化的 DNA。
4. 专用设备
可设置 70℃ 的恒温板,手提式长波紫外灯(302nm),可设置 16℃ 的水浴。
二、方法
1. 建立一个酶切反应体系(不超过 20 ul),用适当的限制酶消化一定量的靶 DNA,要求最后能获得 250 ng 的目的片段。
2. 用低熔点琼脂糖凝胶电泳分离 DNA 片段。
3. 长波紫外灯下检査凝胶中 DNA 的电泳情况,根据条带的荧光强度估计 DNA 的量,用洁净的手术刀片切下目的条带,尽可能少切琼脂糖(一般约为 40~50 ul)。各目的条带都留下少许在凝胶中不要切,用于照相中表示各条带在凝胶电泳中的位置。
4. 将切下的凝胶片分别装入已做好标记的微量离心管中。
也可以将切下的凝胶片装在密封的微量离心管中于 4℃ 保存几天。
5. 离心管置于 70℃ 恒温块 15 min 以熔化凝胶条,确定离心管中凝胶的体积并计算含有约 200 ng DNA 所需的体积。
这样做的目的是用 10 ul 或更小的体积收取 200 ng 量的 DNA。这要取决于实际情况。对于含量低于 10 的条带(在凝胶中刚好可见),连接仍可进行,尽管连接效率较低。
6. 预热一个无菌的微量离心管至 37℃ 立即加入下列成分:
去磷酸化质粒 DNA 60 fmol,外源 DNA 片段 120~240 fmol(不超过 10 ul 体积)。
用一个无菌一次性吸头快速混匀上述混合物,避免琼脂糖凝胶凝固。
在连接反应中,外源 DNA 片段与质粒载体的摩尔比一般在 2:1~4:1 之间。
7. 给每一个反应管相应地做两个对照,一个只加去磷酸化质粒载体,另一个只加外源 DNA 片段。
8. 上述的反应管置于 37℃ 温育 5~10 min,而后每管加入现冷的 10 ul 2X T4 噬菌体连接酶反应混合物。用一个无菌一次性吸头快速混匀上述混合物,避免琼脂糖凝胶凝固。16℃ 温育 12~16 h。
上述的连接产物可直接用于转化大肠杆菌或电泳。在做转化或电穿孔转化之前,装连接产物的微量离心管需预先于 70℃ 加热 10~15 min 以重新熔解已凝固的凝胶。
习惯上,1~5 ul 连接产物可以用来转化化学方法制备的感受态细胞、而用更为有效的电穿孔转化法则只需 0.1~1.0 ul 的连接产物。采用更大体积进行电穿孔转化会增加溶质的浓度,以至使弧光的发生难以预测。
注意事项
上述的连接产物可直接用于转化大肠杆菌或电泳。在做转化或电穿孔转化之前,装连接产物的微量离心管需预先于 70℃ 加热 10~15 min 以重新熔解已凝固的凝胶。
常见问题
习惯上,1~5 μl 连接产物可以用来转化化学方法制备的感受态细胞、而用更为有效的电穿孔转化法则只需 0.1~1.0 μl 的连接产物。采用更大体积进行电穿孔转化会增加溶质的浓度,以至使弧光的发生难以预测。
本实验来源「分子克隆实验指南第三版」黄培堂等译。
本实验来源「分子克隆实验指南第三版」黄培堂等译。
来源:丁香实验