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方案12.7 鸡胚器官原基

相关实验:鸡胚器官原基

最新修订时间:

原理

切出单一器官或组织,整个置于冷的胰蛋白酶中过夜,去除胰蛋白酶,短暂孵育器官或组织,于培养基中分散细胞,稀释并接种培养物。

材料与仪器

受精卵 DBSS 粗制胰蛋白酶
培养基 皮氏平皿
镊子 虹膜刀 移液器 试管 培养瓶 手术刀

步骤

1. 如前所述(见方案 12.2 ) 取出胚胎(孵化10~13天的受精卵(>10天在英国需要许可证)),放入无菌的 BSS 中。

2. 除去头部。





3. 切除眼球,小心剖开后清除晶状体、房水、玻璃体。





4. 用两把尖镊子夹住视网膜,轻轻将色素层与神经层及结缔组织分开 (10 天的胚胎需要用解剖镜。用 0.25% 胰蛋白酶(0.25 粗制胰蛋白酶(Difco 1 : 250 或同等级别的产品),以 RPMI1640 或 S-MEM 配制,置于冰上。如果用纯的胰蛋白酶,浓度可降低,如 Sigma 的“结晶级”或 Worthington 的“IV级”可配成 0.05%~0.1% 的浓度)及 1 mmol/L 的 EDTA 溶液短暂浸泡可促使两组织易于分离)。将分离的组织放于一侧。



5. 用弯镊子刺破颅顶,用勺取出脑,将脑、视网膜一起放于皿的一侧。



6. 从躯干的中间断开(此处肝透过腹壁显出粉红色),若切在膈的位置则将从心脏和肝脏之间通过,但有时肝脏会出现在前半部而不是后半部。



7. 轻轻探入切面的前半部,取出心脏和肺(挑出器官,确认后再切),把分离后的心脏和肺放于皿中的一侧。



8. 探入后半部,取出肝脏,由于肠夹于肝脏的两叶之间可一并取出,分离肝和肠放于皿的一侧。



9. 折回体壁后半体腔背侧面的内壁,可见长的分叶状的肾并行排列于中线两侧。

10. 用刀尖轻轻地滑至肾的背面,使肾自躯体背面内侧壁剥离(10 天的胚胎需要用解剖镜),将肾分离下来后放于一侧。



11. 将两把手术刀置于后部未端的中线上,尖端向前,交替前进像挤牙膏一样将脊髄挤出。



12. 将胚胎后部躯干翻转,将皮肤自背部和腿上部撕脱,收集皮肤放于一侧。



13. 自每条腿的股部切下肌肉,收集到一起。



14. 将所有这些收集的组织以及其他所盖要的任何组织分別转入含 1 ml 0.25% 胰蛋白酶的试管中,放于冰上,确认组织块已沉入胰蛋白酶溶液中。

15. 于 4°C 放置 6~18 h 。

16. 小心吸去胰蛋白酶,不要搅动组织块;振动或慢慢旋转试管将有助于消化。

17. 组织块在剩余的胰蛋白酶中 37°C 孵育 15~20 min。

18. 每种组织接种两个 25 cm2 培养瓶,每个培养瓶加 4 ml 的培养基。

19. 向含组织和剩余胰蛋白酶的试管中加入 2 ml 培养基,轻轻上下吸打分散组织。

20. 让大块组织沉淀。

21. 将上清吸入第一个培养瓶中,混匀,将 1 ml 稀释的悬液移入第 2 个培养瓶。这样做使得两瓶的细胞密度不同,可免去细胞计数,而试验可确定细胞的适宜浓度,用于以后的实验。

22. 按需要更换培养基(如脑于 24 h 后更换;视网膜色素层则大约保持 5~7 天),并检测形态学特点和功能。

来源:丁香实验

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