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传代培养细胞染色体显示法

相关实验:培养细胞染色体显示法实验

最新修订时间:

原理

培养细胞有来源易得、细胞分裂率高和制出标本清晰度高等优点,是制备染色体极好的对象。

材料与仪器

细胞
Hanks NaHCO3 培养基 血清 秋水仙素
酒精灯 镊子 培养瓶 吸管 离心管

步骤

1.  培养细胞

取处于指数生长期、用较大瓶皿培养的、80 %~90 %汇合单层培养细
胞;

2.  加秋水仙素

使用最终浓度为0.02~0.8 μg/ml营养液;温箱继续培养6~10 
小时;

或用低温封闭法:把培养细胞置于4 ℃条件下6~12 小时后,再于37 ℃
温箱中继续培养6~10 小时处理(加秋水仙素);

3.  采集分裂细胞

可利用分裂中期细胞体变圆与底物附着不牢特点,此时手持培
养瓶,左右反复横向水平摇动,令培养液在培养细胞表面反复冲涮;应用此法可使90 %的中期分裂细胞从瓶壁脱落;注意勿用力过猛,以防多量非分裂细胞脱落影响观察;

4.  离心

收集培养液,1000 转/分钟,离心5~10 分钟;

5.  低渗处理

吸除上清液、加入预温至37 ℃的0.075 M KCl溶液,在温箱中静置
20~30 分钟;

6.  预固定

向悬液中加新鲜1:3醋酸、甲醇固定液1 ml,用吸管吹打调匀;此措
施能起到先使细胞表面轻微固定,可防止固定后细胞粘连成块;

7.  固定

离心,同4,吸除上清液,加新鲜固定剂5~10 ml;加固定剂时要用一
手微斜持离心管,另手用吸管吸取固定剂,把固定剂逐滴滴在离心管壁上,使之慢慢流入离心管中,然后轻轻吹打均匀,置15~20 分钟;

8.  重复7,末次离心后,小心吸除大部上清,据悬液中细胞密度大小,余下固定液0.5~1 ml;

9.  制片

用滴片法制片,按如下步骤:彻底洗净载物片,勿留任何油脂,置冰箱中
储存备用。滴片前现从冰箱中取出冷载物片1 张,在载物片表面出现细微水气时,立即向片的一侧滴2~3 滴细胞悬液(如固定液不散,可能因载物片未洗净或不冷所致),滴片时的距离能保持半米高度才好。滴片后置室温中令其自然干燥,或用吹风机热风吹干亦可。如此制备好的标本可置盒中备用(做显带或荧光观察等)或立即进行染色观察;

10.  染色和封片

一般常用Giemsa染色;取干液Giemsa1 份加pH6.8磷酸缓冲液
9 份混合,染色10 分钟后,水洗、晾干、可直接观察(适用油浸镜);如标本需要保存或做长时间观察,可过二甲苯两次后,用中性树胶封片(或先迅速过丙酮两次,每次30 秒)后,再过二甲苯,然后封片亦可。

常见问题

一、讨论

1.  染色体制备过程是既易又难的方法;易在要求条件简单、操作不复杂繁锁,
易于获得结果。

2.  难在制备出的标本不总是非常理想和一致,常出现分裂相数少、染色体分
散不良、或染色体过短等,为此在初做时,应试做预试验,摸清诸条件,能提高成功率。

来源:丁香实验

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