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免疫电泳实验
免疫电泳(immunoelectrophoresis) 技术是基于抗原的电泳迁移以及与抗体的专一性免疫亲和或沉淀反应来鉴定其强度和特异性。在大部分电泳中,样品中的抗原通过含有相应抗体的 pH 8.6 的薄层琼脂糖凝胶,抗原在 pH 8.6 时通常带强负电,与在含有抗体的凝胶中电泳时发生免疫反应。本实验来源「蛋白质电泳实验技术」主编:郭尧君。
实验概况收录 5 操作方法 · 2 相关问答 · 3 相关文章
双向电泳实验
双向电泳可应用于蛋白质组学研究。
实验概况收录 2 操作方法 · 3 相关文章
电泳
电泳时温度可控制在 10~15℃,同前述电泳的方法一样,先在冷却板上铺一层煤油,再铺胶。电极芯与凝胶的边缘接触 5~10 mm,并保持平行,电泳时的电场强度约为 20 V/cm。
操作方法所属实验:免疫电泳实验
电泳
一、垂直电泳SDS 和常规聚丙烯酰胺凝胶垂直电泳的方法基本相同。将缓冲液贮液稀释一倍便为连续电泳的电极缓冲液。不连续 SDS 电泳的电极缓冲液常用 Tris-甘氨酸系统(0.025 mol/L Tris,0.192 mol/L 甘氨酸,0.1% SDS,pH 8.3 )。二、水平电泳和常规聚丙烯酰胺凝胶电泳一样,SDS 水平电泳目前也有三种方式,即经典的搭接滤纸桥的方式和二种半干方式。前者操作麻烦,电泳时间长。半干技术在保证分辨率的前提下,电泳时间只需 1 小时(分离距离 8 cm),且节省
操作方法所属实验:SDS 聚丙烯酰胺凝胶电泳
实验问答2639 围观
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核酸电泳应用——制备型和分析型电泳

核酸电泳在许多分子生物学研究应用中都可用来检验实验结果,有时也可用于分离和纯化样品,以便进行后续应用。因此,常规核酸电泳的应用通常可以分为分析和制备两种类型,两者均依赖于分离、溶解和定量技术。 1.用于确认实验结果的分析型电泳 在进入下一步工作流程或另一组实验之前,可使用分析型核酸电泳检验实验结果。正如下文所述,该方法主要针对凝胶中是否存在目标条带,以及条带的强度、迁移模式、迁移率和杂交情况进行评估。 a. 检验酶促合成、消化和克隆实验是否成功 核酸的电泳分析通常在以下技术(图 1)后立即

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BIO-RAD(伯乐)电泳仪、电泳

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凝胶电泳实验
在优化实验条件时,应该同时用含有甘油和不含甘油的凝胶分离PCR产物,并对放射性自显影的结果进行比较。利用这两种凝胶分析同一种样品的预实验结果可以在24h之内获得。一旦实验条件确定下来,特定实验所优选的凝胶类型就可以应用到该基因座的所有样品的分析中。本实验来源于 PCR 实验指南(第二版),作者:种康,瞿礼嘉。
实验概况收录 1 操作方法 · 1 相关问答 · 3 相关文章
火箭电泳实验
定量的抗原加入到含有一定量的相应抗体的琼脂糖凝胶中,在电场作用下,引起抗原抗体的迁移和相互反应,当比例合适时形成肉眼可见的沉淀峰,由于电泳继续进行,样品孔不断有抗原移向抗原抗体复合物的沉淀峰,因抗原过剩使沉淀溶解而在前面又形成新的抗原抗体复合物的沉淀峰。
实验概况收录 1 操作方法 · 3 相关文章
电泳
一、垂直电泳如果进行垂直电泳,按说明书先在电泳槽的下槽中装入电极缓冲液。将聚合后的凝胶连同玻璃板一起放入电泳槽中,在上槽中注入电极缓冲液,打开冷却循环系统,连接电源。一般起始电压约为 70~80V,然后不断升高。起始电流可设置为 20~30 mA,取决于凝胶的厚度,大小和样品数。在电泳过程中,应记录电参数的变化,以便以后重复。一般垂直电泳需要 2~6 小时,取决于凝胶孔径,特别是缓冲系统和电参数的选择。待溴酚蓝前沿到达电泳槽底部(阳极)时,切断电源,关掉冷却循环系统。取出凝胶,准备染色。二
操作方法所属实验:常规聚丙烯酰胺凝胶电泳实验
连续电泳
1. 连续洗脱电泳使用连续洗脱的聚丙烯酰胺凝胶电泳或琼脂糖电泳能制备微克到毫克级的多肽,蛋白或核酸。装置可以是各种各样的。有的是把样品直接加在固体凝胶的表面,分子经过电泳分离后,由流动的缓冲液洗脱,纯化后的分子被浓缩,并由蠕动泵和部分收集器收集。2. 连续自由流动电泳连续自由流动电泳是一种经典的用于分析的电泳,分辨率不高。现在较多的用于制备,如多通道流动电泳技术能在每小时处理几十毫克样品,并具有较高的活力。3. 空间电泳在地面实验中,对流和样品沉降是自由溶液电泳分离的两大限制因子。但在空间
操作方法所属实验:制备电泳实验
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BIO-RAD(伯乐)电泳仪、电泳

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电泳技术

电泳法,是指带电荷的供试品(蛋白质、核苷酸等)在惰性支持介质(如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等)中,于电场的作用下,向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动,使组分分离成狭窄的区带,用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其百分含量的方法。 电泳技术的基本原理和分类在电场中,推动带电质点运动的力(F)等于质点所带净电荷量(Q)与电场强度(E)的乘积。F=QE质点的前移同样要受到阻力(F)的影响,对于一个球形质点,服从Stoke定律,即:F′=6πrην式中r为质点半径,η为介质粘度

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DNA 电泳(agarose 胶)
DNA电泳可用于:(1)分离不同大小的DNA片段;(2)鉴定目的DNA片段;(3)纯化和回收DNA片段。
实验概况收录 1 操作方法 · 1 相关问答 · 3 相关文章
单向凝胶电泳实验
本书所介绍的S D S ——P A G E 方法将满足本领域大部分应用的需要。作者: 伯吉斯等,主译:陈薇,本实验来自「蛋白质纯化指南」
实验概况收录 1 操作方法 · 3 相关文章
电泳
点得细窄而均匀。3.  电泳: 已点好样品的薄膜架在铺有滤纸桥的电泳槽上,使点样端靠近阴极, 膜用镊子轻轻拉平不能贴在槽底。盖好槽盖, 通电, 控制电流强度为0 . 7 ~ 0 . 8 mA/ cm 膜宽, 当白蛋白(仔细观察可见淡黄色) 移动约3 cm 即可切断电源停止电泳, 一般为40~60 min。4.  染色和漂洗: 取下膜, 立即浸入染色液中10 min。取出移入2 . 5%醋酸中漂洗脱色, 每隔5 min 换一次漂洗液, 直至膜背景无色为止( 约更换3 次) , 即可观察到清晰的电泳
操作方法所属实验:醋酸纤维素膜电泳分离鉴定蛋白质实验
电泳
1.  用胶带将洗净、干燥的制胶板的两端封好,水平放置在工作台上;2.  调整好梳子的高度;3.  称取0.24 g琼脂糖于30 ml 0.5×TBE中,在微波炉中使琼脂糖颗粒完全溶解,冷却至45-50篊时倒入制胶板中;4.  凝胶凝固后,小心拔去梳子,撕下胶带;5.  将电泳样品与溴酚蓝混合后将样品依次点入加样孔中;pUC185祃+ddH2O3祃+溴酚蓝2祃共10祃于0.5 ml tube中混合后点样;6.  将制胶板放入电泳槽中,加入电泳液,打开电泳仪,使核酸样品向正极泳动;7.  电泳
操作方法所属实验:DNA 的琼脂糖凝胶电泳实验
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