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免疫电泳实验

实验分类:

蛋白质实验

最新修订时间:

简介

免疫电泳(immunoelectrophoresis) 技术是基于抗原的电泳迁移以及与抗体的专一性免疫亲和或沉淀反应来鉴定其强度和特异性。在大部分电泳中,样品中的抗原通过含有相应抗体的 pH 8.6 的薄层琼脂糖凝胶,抗原在 pH 8.6 时通常带强负电,与在含有抗体的凝胶中电泳时发生免疫反应。本实验来源「蛋白质电泳实验技术」主编:郭尧君。

来源:丁香实验

操作方法

溶液的准备

1. Tris-巴比妥缓冲液贮液 2.24 g 二乙基巴比妥酸,4.43 g Tris,0.053 g 乳酸钙,0.065 g 叠氮钠,用双蒸水溶解后,在容量瓶中定容至 100 ml。 2. 电极缓冲液 用双蒸水稀释 4 倍。 3. 1% 琼脂糖溶液 选择合适电内渗的琼脂糖,为避免它水化时成团,常将琼脂糖粉撒在上述配制的缓冲液上,煮沸溶解,在 90℃ 水浴上加热,搅拌,直至溶液转为透明。

倒胶

为使琼脂糖溶液均匀铺层和得到重复的结果,玻璃板必须水平放置。 为便于在免疫电泳中从第一向到第二向的转移,最好使用琼脂糖凝胶支持膜。12 ml 琼脂糖溶液在 84 cm X 94 cm 上的凝胶厚度为 1.5 mm。倒胶后约 3 分钟凝固。待其冷却到室温后,把它放在保湿盒中,使用前在冰箱中放 1 小时,这样可以使凝胶强度增加,防止凝胶破碎。

打孔与加样

打孔器直径可为 2.0 mm、2.5 mm、4.0 mm,相应于 1.5 mm 厚度凝胶的样品体积为 2 μl、5 μl 和 10 μl。 最佳加样量为 1~15 μl。加样时,针要插入孔中的所有方向,以防止空气在加样孔中的 “座垫” 作用而使样品溢出凝胶表面。

电泳

电泳时温度可控制在 10~15℃,同前述电泳的方法一样,先在冷却板上铺一层煤油,再铺胶。电极芯与凝胶的边缘接触 5~10 mm,并保持平行,电泳时的电场强度约为 20 V/cm。

检测

如用考马斯亮蓝染色,先用生理盐水洗去没有反应的蛋白。为了加速染色步骤,将凝胶压干。(将凝胶放在玻璃板上,先用蒸馏水湿润。在小孔中注入双蒸水,以防止凝胶压扁时,小孔中的空气使凝胶破裂。用一张湿滤纸和 5 张干滤纸盖在上面。再在上面放一块玻璃板和压 1 kg 重物。3 分钟后,用 5 张干滤纸换上面 5 张湿滤纸,重复两次这样的过程,小心地除去所有的滤纸。)用 0.1 mol/L 氯化钠溶液洗 20

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