土井挞克树
转染过程
⑴取0.67ug(50pmol)的siRNA,加入一定量无血清稀释液,充分混匀,制成RNA稀释液,终体积为25μl。
注意:无血清稀释液建议采用OPTI-MEM、无血清DMEM或1640。
⑵取1ul的EntransterTM-R4000,然后加入24ul无血清稀释液体,充分混匀,制成EntransterTM-R4000稀释液,终体积为25μl。室温静置5分钟。
⑶将EntransterTM-R4000稀释液和RNA稀释液充分混合(可用振荡器振荡或用加样器吹吸10次以上)混合,室温静置15分钟。转染复合物制备完成。
⑷将50μl转染复合物滴加到有0.45ml全培养基(可含10%血清和抗生素)的细胞上,前后移动培养皿,混合均匀。
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可以借鉴一下这篇文章《骨髓间充质干细胞的转染》
一、试验材料:
1、LB液体造就基:称取蛋白胨10g,酵母提取物5g,氯化钠10g,溶于800ml去离子水中,用NaOH调整PH到7.5,加去离子水定容至1L,高压灭菌20min.
2、LB平板造就基:LB液体造就基中按1.5%的浓度参与琼脂,加热溶解,进行高压灭菌。取出后趁热在无菌条件下,倒入无菌的平皿中,每套平皿中参与12-15ml,凝固后倒置,4℃冰箱保存备用。
3、0.1mol/lCaCL2溶液:称取1.1g 五水CaCL2用双蒸水溶解,定容到100ml.高压灭菌20min。
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下面是一般的骨髓间充质干细胞转染的步骤:
准备质粒和转染试剂。根据需要表达的基因,准备相应的质粒DNA,并用纯化试剂盒进行纯化。此外,根据转染试剂的不同,也可以选择不同的转染试剂进行转染。
转染试剂与质粒DNA的混合。根据不同的转染试剂,将质粒DNA和转染试剂按照说明书上的比例进行混合,通常需要在室温下静置一段时间。
细胞处理。将骨髓间充质干细胞移植到细胞培养皿中,并培养到约 70-80% 的密度。在转染前,将细胞培养基更换为不含抗生素和血清的培养基,并将细胞培养温度调整到 37℃。
转染。将混合好的转染试剂和质粒DNA缓慢地加入培养皿中,使其与细胞均匀混合。根据不同的转染试剂,具体的操作方式可能会有所不同。
培养。转染完成后,将细胞培养基更换为含有抗生素和血清的培养基,并将细胞继续培养。根据不同的实验需求,可以选择不同的时间点进行下一步实验。
需要注意的是,不同类型的骨髓间充质干细胞可能对转染试剂的敏感性不同,因此在进行转染前最好先进行小规模的试验来确定最佳的转染条件。此外,为了确保转染的稳定性和可靠性,可以使用荧光标记的质粒 DNA 和细胞以检测转染效率和稳定性。
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