cDNA文库组标准流程四:载体制备
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1 . pBlueScriptII 的提取
1.取1ul商品的pBlueScriptII,转化入大肠杆菌宿主菌中,取5ul转化产物均匀涂布在含AMP的LB平板上,37℃培养过夜。
2.第二天取一只无菌的50ml离心管,加入10ml AMP抗性的LB液体培养基,挑单克隆于离心管中,37℃,250rpm,培养过夜。
3.第三天取200µl小摇后的菌液接种于250ml 含AMP的LB液体培养基中,37℃,250rpm培养6 hr左右,使OD值达到0.6-0.8。
4.将菌液移入250ml离心管中, 4℃,3000rpm,离心15min。取出离心管,菌团朝上倒掉上清,将离心管倒置于吸水纸上使上清充分滤干。(注意离心前需配平)
5.加入10ml溶液Ⅰ(50mM Glucose , 25mM Tris-HCl,10mM EDTA, pH8.0),加入RNase至终浓度100µg/ml,晃动摇菌,使菌体充分悬浮,静置10min。
6.按NaOH(0.4N):SDS(2%)--1:1的比例新鲜配制溶液Ⅱ,加入20ml溶液Ⅱ,静置3-5min。
注: 静置时间勿超过5min,提前将溶液Ⅲ置于冰盒中。
7.加入15ml冰浴的溶液Ⅲ,冰浴15-30min。
8.4℃,5000rpm,离心15min。
9.取上清于两个50ml离心管中,弃去原离心管中的沉淀。
10.每管加入0.6倍体积的异丙醇,充分混匀,室温下放置10min。
11. 20℃,12000g,离心20min回收质粒沉淀。
12.弃上清,用70%的乙醇洗2次。
13.弃上清,倒扣于吸水纸上,尽量空干液体。
14.用3ml TE(pH8.0)溶解沉淀,移入1.5ml Eppendorf离心管中。
15.电泳检查DNA质量并定量。(必要的话,可以用胶回收的方法先纯化一下质粒再进行双酶切。)
2 .pBlueScriptII的双酶切消化
1.以如下体系进行EcoRI酶切:
pBSK(+) X µl(6µg)
ddH2O 174-X µl
10×Buffer E 20 µl
混匀,加入限制性内切酶:
EcoRI (10U/ µl) 6 µl
总体积为200 µl。
2.轻弹管壁或用枪头轻轻吹打混匀,在离心机上甩一下。
3.37℃,水浴1hr。
4.加入200ul 1:1的酚/氯仿,混匀。4℃,13000rpm,离心15min。
5.取上清,加入等体积的氯仿,4℃,13000rpm,离心10min。
6.取上清,加入0.1倍体积的NaAC和2.5倍体积的无水乙醇,-20℃,沉淀30min。
7. 4℃,13000rpm,离心10min,弃上清,取沉淀。
8.加入200ul 70%的乙醇洗沉淀。
9.4℃,13000rpm,离心10min,弃上清,取沉淀。
10.自然风干沉淀,至无乙醇味,加入100ul ddH2O充分溶解沉淀。
11.加入以下试剂进行XhoI酶切:
ddH2O 74 µl
10×Buffer D 20 µl
混匀,加入限制性内切酶XhoI:
XhoI (10U/ µl) 6 µl
总体积为200 µl。
12.轻弹管壁或用枪头轻轻吹打混匀,在离心机上甩一下
13.37℃,水浴1.5hr。
14.加入200ul 1:1的酚/氯仿,混匀。
15.4℃,13000rpm,离心15min。
16.取上清,加入等体积的氯仿,4℃,13000rpm,离心10min。
17.取上清,加入0.1倍体积的NaAC和2.5倍体积的无水乙醇,-20℃,沉淀30min。
18. 4℃,13000rpm,离心10min,弃上清,取沉淀。
19.加入200ul 70%的乙醇洗沉淀。
20.4℃,13000rpm,离心10min,弃上清,取沉淀。
21.自然风干沉淀至无乙醇味,加入40ulddH2O充分溶解沉淀,得到双酶切载体。
3 .载体去磷酸化
1.在40ul双酶切载体中加入以下试剂:
6ul 10×buffer
6ul CIAP(0.01U/ul)
8ul ddH2O
总体积60ul。
2.轻弹管壁或用枪头轻轻吹打混匀,在离心机上甩一下。
3.37℃,水浴1hr。
4.70℃,15min,灭活酶。
5.电泳分离,胶回收双酶切载体,定量。
4 .载体效率检测
1.按以下所示作4个连接反应:
|
DNA |
连接酶 |
|
1 |
pBlueScriptII/E/X /CIAP |
- |
检测酶切效率 |
2 |
pBlueScriptII/E/X /CIAP |
+ |
检测脱磷效率,载体自连效率 |
3 |
商品Vector加标准Insert |
+ |
对照 |
4 |
自制Vector加标准Insert |
+ |
检测载体效率 |
14℃连接过夜。
2. 各取1ul连接产物作电转化(具体流程见电转化)
3.计算克隆数,计算载体相对脱磷效率及连接效率。