RNA酶保护试验((RNase Protection Assay,RPA)方法

<font><span><font>一、试剂准备<br /> 1． GACU POOL：取100mM ATP、CTP、GTP各2.78μl、100mM UTP 0.06μl，加DEPC H2O至100μl。<br /> 2. 杂交缓冲液 IPES 0.134g、0.5M EDTA（pH8.0）20μl、5M NaCl 0.8ml、甲酰胺8ml，加DEPC H2O至10ml。<br /> 3. RNase消化液：5M NaCl 120μl、1M Tris-HCl(pH7.4) 20μl、0.5M EDTA（pH8.0）20μl、RNase A(10mg/ml) 8μl、RNase T1(250U/μl) 1μl，加DEPC H2O至2ml<br /> 二、操作步骤<br /> 1．反义RNA可由含T7或SP6启动子的重组质粒为模板制备，也可以用含启动子的PCR产物为模板制备，本文介绍后者。<br /> （1）设计含T7启动子的PCR引物<br /> 由于PCR产物将作为合成反义RNA的模板，所以一对引物中的下游引物5’-端要含T7启动子序列:<br /> <br /> T7启动子序列为：5’-TAATACGACTCACTATAGGG<br /> <br /> 　<br /> <br /> 引物设计的其他要求与一般PCR引物的设计相同。PCR产物的长度决定了反义RNA探针的长度，具体设计时可考虑100-400bp长。最好采用巢式PCR，即先扩增出一较长的片段，再以该片段为模板扩增出较短的片段，以保证探针的特异性，如下图所示：<br /> <br /> <br /> <br /> 上游引物<br /> <br /> 下游引物Ⅱ T7 启动子序列<br /> <br /> 下游引物Ⅰ<br /> <br /> <br /> （2）PCR<br /> <br /> 先用上游引物和下游引物Ⅰ进行PCR，再以PCR 产物为模板,用上游引物和下游引物Ⅱ-T7进行二次PCR(具体操作参见PCR章节)。<br /> <br /> （3）探针合成标记与纯化<br /> <br /> 在0.5ml 离心管中加入下列试剂：<br /> <br /> RNasin （40U/μl） 0.5μl<br /> <br /> GACU POOL GAC<br /> <br /> （含GTP、CTP、ATP各2.75 mM,UTP 61μM） 2μl<br /> <br /> [α-32P]UTP(10μCi/μl) 2.5μl<br /> <br /> DTT (二硫苏糖醇，0.1M) 1μl<br /> <br /> 5×转录 buffer 2μl<br /> <br /> 模板（50ng/μl） 1μl<br /> <br /> T7 RNA 聚合酶 (15U) 1μl<br /> <br /> 混合后，短暂离心，37OC保温1hr。<br /> <br /> 加入DNaseⅠ（10U/μl）1μl, 37OC 15min, 然后75 OC 10min以灭活DNAseⅠ和T7 RNA 聚合酶。<br /> <br /> 加入：饱和酚 50μl<br /> <br /> 氯仿 50μl<br /> <br /> 酵母tRNA（2μg/μl） 4μl<br /> <br /> DEPC H2O 100μl<br /> <br /> 室温下充分混匀，离心10000g×2min。取上层液置另一0.5 ml离心管中，加入100μl氯仿，混匀，离心10000g×2min。将上层液转移至另一0.5ml 离心管中，再加入3M NaAc 10μl、预冷无水乙醇250μl，混匀后，-20OC静置30min。4OC离心13500g×10min。弃上清液，沉淀用75%乙醇100μl洗涤，4OC离心13500g×2min, 弃上清液。室温下挥发残留乙醇。加入50μl杂交缓冲液溶解沉淀，4OC下保存待用。可用尿素-聚丙烯酰胺凝胶电泳检测探针质量。（参见本节电泳步骤）。<br /> <br /> 2．杂交<br /> <br /> （1） RNA提取后溶解在杂交缓冲液中，浓度为1μg/μl。<br /> <br /> （2）取8μl RNA加入1-3μl探针（根据探针检测结果调整）于0.5ml 离心管中。<br /> <br /> （2） 80OC保温2min，然后40-45OC下杂交12-18hr。<br /> <br /> 3. 消化<br /> <br /> (1) 杂交管于37 OC保温15min，加入RNase消化液，37 OC保温30min。<br /> <br /> (2) 加入10%SDS 10μl、10μg/μl蛋白酶K 20μl，混匀，37 OC保温10min。<br /> <br /> (3) 加入65μl饱和酚和65μl氯仿，混匀，室温离心，10000g×2min。<br /> <br /> (4) 转移上层液到另一0.5离心管中，加入10μl酵母tRNA和3M NaAc 15μl，再加入200μl异丙醇，混匀后，置-20OC 30min，4 OC离心,135000g×10min。<br /> <br /> (5) 弃上清液，室温下挥发乙醇，加入5-8μl上样缓冲液溶解沉淀。<br /> <br /> 4、电泳与放射自显影<br /> <br /> （1）配制凝胶：(50ml)<br /> <br /> 40%丙烯酰胺-亚甲双丙烯酰胺（19：1） 6.25ml<br /> <br /> 5×TBE 10ml<br /> <br /> 尿素 24g<br /> <br /> 加H2O至50ml<br /> <br /> 溶解后加入25%过硫酸胺50μl，TEMED 50μl，混匀，注入电泳槽中，插入梳，待胶凝固。<br /> <br /> （2）预电泳<br /> <br /> 以1×TBE为上下槽电泳缓冲液，加上电压后进行预电泳，如果用测序电泳装置，电压应达2000v以上，功率设定为100w，温度设为50 OC。待胶板温度达50 OC时，暂停电泳，准备加样。<br /> <br /> （3）加样<br /> <br /> 将已溶解在加样缓冲液中的样品80 OC加热2min，立即加样到胶孔中，电泳1-2hr。（电泳条件同预电泳）。<br /> <br /> （3） 电泳结束后，打开胶板，用滤纸取下胶，覆上一层保鲜膜，放置于暗盒中，暗室红光下，压上一张X片，盖上暗盒，-70OC曝光1-3天。暴光结束后，将X光片显影、定影、水洗、晾干。 </font> </span><br /> </font>