原理
材料与仪器
DNase Ⅰ 单链特异性的 RNase 反应缓冲液 EDTA 水饱和酚 氯仿 异戊醇
T7 RNA 体外转录试剂盒 聚丙烯酰胺凝胶 电泳装置
步骤
1. 合成的 DNA 寡核苷酸。
2. 靶基因 cDNA。
3. T7 RNA 体外转录试剂盒(Promega 公司)。
4. DNase Ⅰ 和单链特异性的 RNase。
5. 重组的 Dicer 酶。
6. 蛋白酶 K ( 0.2 mg/ml)。
7. 1X Dicer 反应缓冲液(250 mmol/L NaCl,30 mmol/L HEPES ( pH 8.0 ), 0.05 mmol/L EDTA,2.5 mmol/L MgCl2 )。
8. EDTA 10 mmol/L ( pH 8.0 )。
9. 水饱和酚。
10. 氯仿:异戊醇 ( 24 : 1 )。
11. 聚丙烯酰胺凝胶。
12. 电泳装置。
二、操作方法
1. 将靶基因 cDNA 片段按正反两个方向克隆到 T7 启动子的下游,并采用 T7 RNA 体外转录试剂盒转录合成互补的两条 RNA 链,两条 RNA 链在体外互补形成双链 RNA 分子,纯化后备用(具体的操作方法见体外转录合成 siRNA 分子)。
2. 在 1X Dicer 反应缓冲液中加入约 500 ng 纯化后的双链 RNA 和适量的 r-Dicer,在 37℃ 反应适当的时间后(通过预实验确定)加入 10 mmol/L EDTA 终止反应,经蛋白酶 K 处理后,采用酚:氯仿:异戊醇 ( 25 : 24 : 1 ) 抽提。如果是大量制备的话,其中的蛋白质与残留的长 dsRNA 应该通过凝胶纯化或通过柱层析纯化。
3. 纯化获得的 siRNA 分子混合物可以直接用于转染细胞,或置 -20°C 保存。siRNA 双链复合物可以经过几轮冻融而不受影响,不需要经过再次变性退火处理。但是在处理 siRNA 分子时,建议最好将 RNA 溶液置于冰浴中,以降低 RNA 水解的速率。
4. 为了确定获得的 siRNA 分子的大小,可以通过 18% 变性聚丙烯酰胺凝胶 ( PAGE ) 进行分离并用合成的单链 RNA 分子作为对照;也可以通过 15% 的非变性聚丙烯酰胺凝胶进行分离,分子量对照采用合成的双链 siRNA 分子。
来源:丁香实验