提问
提问
我要登录
|免费注册
点赞
收藏
wx-share
分享

我作NORTHERN的心得

互联网

857

<font>我们试验室作NORTHERN的一些总结,欢迎指正,谢谢。<br /> Northern杂交<br /> 准备物品:50ml量筒1个 100ml量筒1个 300ml烧杯1个 250ml 烧杯1个 250ml的锥形瓶1个 10ml 离心管2个 大小盘各1个 镊子1把 剪刀1把 DEPC水500ml 2,瓶玻璃棒1根 电泳槽、转膜槽、梳子、杂交桶 以上物品均用DCPE水处理<br /> 一、试剂<br /> 1. 4 M LiCl (50ml) LiCl 8.478g定量至50ml,DEPC处理,灭菌。<br /> 2. 1 M Na3PO4 (50ml) 19.01g定量至50ml,DEPC处理,灭菌。<br /> (注:该溶液配完后,可以溶解并消毒,但是不要放在4℃,其溶解性不好,放在室温下仍有小结晶。)<br /> 3. 10% SDS (100ml) SDS 10g加入100ml DEPC水。<br /> (注:含有SDS消毒容易喷出瓶塞,应用牛皮纸包扎紧)<br /> 4. 10% N-lauroylsarcosine (10ml) 0.2―0.45 um膜过滤。<br /> 5. BufferⅠ:Maleic acid buffer (500ml) 1× 用NaOH调pH为7.5,DEPC处理。<br /> (注:调节PH时,需要的碱较多,可以直接加入固体粉末约2克。)<br /> 0.1M maleic acid 5.8g<br /> 0.15M NaCl 4.4g<br /> 6. BufferⅡ:Blocking solution 1% (100ml)<br /> Blocking Reagent 1g,加入100ml maleic acid buffer,60℃溶解1小时,加入100ul DEPC处理,灭菌。<br /> 7. 洗液Ⅰ (500ml) 2×SSC,0.1%SDS DEPC处理 使用量:50ml/100cm2<br /> 20×SSC 50ml + 10% SDS 5ml + 水445ml<br /> (注:含有SDS消毒容易喷出瓶塞,应用牛皮纸包扎紧)<br /> 8. 洗液Ⅱ (500ml) 0.1×SSC,0.1%SDS DEPC处理<br /> 20×SSC 2.5ml + 10% SDS 5ml + 水497.5ml<br /> (注:含有SDS消毒容易喷出瓶塞,应用牛皮纸包扎紧)<br /> 9. Washing Buffer (300ml): Maleic acid buffer + 0.3% Tween 20 (v/v)<br /> 10. Detection buffer (200ml) DEPC处理)PH9.5<br /> 0.1M Tris-HCl 2.42g<br /> 0.1M NaCl 5M NaCl 4ml<br /> 50mM MgCl2 2.03g<br /> 11. High SDS hybridization buffer (50ml),混匀,水浴或65℃烤箱1小时,置-20℃保存。<br /> (注:使用时新鲜配置)<br /> DEPC处理水 9ml<br /> SDS 7% 3.5g<br /> Formamide, deionized, 50% 25ml<br /> 20×SSC 12.5ml<br /> 1M sodium phosphate, pH 7.0 2.5ml<br /> N-lauroylsarcosine, 0.1% (w/v) 0.5ml<br /> blocking reagent, 2% 1g<br /> 12.1000ml<br /> 0. 01N的NaOH 0.4g<br /> 3M的NaCl 175.32g<br /> 13. 20×SSC (500ml) DEPC处理<br /> 3M NaCl 87.66g<br /> 0.3M sodium citrate 44.12g<br /> 用10M NaOH调pH7.0<br /> 14. 10×MOPS电泳缓冲液:小烧杯中MOPS 4.19g,加入DEPC水,3M乙酸钠2.67ml,用10M NaOH调pH7.0,加入0.5M EDTA 2ml,用DEPC水定量至100ml,过滤除菌,倒入棕色瓶中,4℃保存。<br /> 15. 1M Tris-HCL (200 ml)<br /> 称取Tris碱24.22g,加纯水溶解,用浓盐酸调pH8.0,定量至200ml,加入DEPC 200ul,过夜,消毒。<br /> 16. 0.5M Tris-HCl (pH7.4) / 1.5M NaCl<br /> 称取Tris碱15.2g,加水约200ml。用浓盐酸调pH7.4,再加入NaCl 43.83g,定量至250ml,高压消毒。<br /> 17. loading buffer : 1ml, pH8.0<br /> 甘油(50%) 0.5ml<br /> EDTA(1mM) 0.5M EDTA 2ul<br /> 0.25%溴酚蓝 0.0025g<br /> 0.25%二甲苯青FF 0.0025g<br /> DEPC水 0.48ml<br /> 18. 3mol/l乙酸钠 100ml: 乙酸钠40.8g,加入水溶解,10M NaOH调pH8.0,DEPC处理。<br /> 19. 0.5M EDTA 50ml:EDTA 9.31g,加入水溶解,10M NaOH调pH8.0,DEPC处理。<br /> <br /> 二、地高辛试剂盒标记cDNA探针(Cat No. 1093657)<br /> 1.DNA模板(0.5-3ug)15ul,沸水加热10分钟变性,迅速置冰浴中;<br /> 2.在冰上加入:<br /> 管5 hexanueleotide mix 2ul ―六聚体引物混合物<br /> 管6 dNTP mixture 2ul―dNTP 混合物<br /> 管7 Klenow enzyme 1ul 聚合酶<br /> 3.混匀,短暂离心,37℃水浴20小时(至少60min);<br /> 4.加入0.5M EDTA 2ul (pH8.0),终止反应;<br /> 5.沉淀:加入4 M LiCl 2.5ul和预冷100%乙醇75ul,混匀,-70℃ 30分钟或-20℃ 2小时。目的沉淀DNA探针<br /> 6.离心12000r, 15min,倒掉,再加入预冷70%乙醇50ul,离心数分钟,倒掉;<br /> 7.空气干燥,加入TE-buffer 50ul<br /> (注:在挥发乙醇时,不能太干,防止DNA不溶解)<br /> <br /> 三、实验操作<br /> 1、甲醛-琼脂糖电泳 <br /> 1) 36ml水溶解0.75g琼脂糖,水浴至60℃,加入5ml 10×MOPS电泳缓冲液及12.3M甲醛(37%) 9ml(注:溶解在用微波炉溶解琼脂糖,尽量防止水分挥发,可以使用底火1.5分钟)<br /> 2) 铺制凝胶,拨去梳子,放入电泳池,加入1×MOPS,约400ml,电泳缓冲液使其淹没凝胶1mm左右;<br /> (注:凝胶凝固较慢,应该放在4℃,约需要1小时,拔起梳子时,应该垂直、快速拔起,防止粘连,使底部暴露。)<br /> 3)在一EP管中加入以下物品,混匀,短暂离心,55℃保温15分钟;然后放在冰上加样,以消除RNA的二级结构。<br /> RNA样品 11ul<br /> 10×MOPS电泳缓冲液 5ul<br /> 12.3M甲醛 9ul<br /> 甲酰胺 25ul<br /> 4)加入5ul加样缓冲液,总体积55ul,混匀,在5v/cm电压下(80mv)电泳至溴酚蓝泳动了凝胶长度的2/3;约需要1.5-2小时。点样时应该避免点在边上的孔中,不利于转膜时覆盖橡胶膜。(注:剪膜大小约10x9cm,此时应该把用DEPC水把尼龙膜自然浸湿,约需要3h)<br /> 5)取出凝胶,用0.01N的 NaOH和3M NaCl洗涤15min×2次;<br /> 6)用真空转移器把RNA从胶上转移至膜上,以0.01N的 NaOH和3M NaCl为转移缓冲液。 10cmHg,3 hr;<br /> (注:连好真空泵后应该实验一下,然后在放置凝胶,凝胶比较软,应该果断的把凝胶取出,并且反转一下,利于转膜,不能有气泡,应该用玻璃棒轻轻赶出,液面始终高于凝胶才有效,避免加样孔接触尼龙膜边缘,不利于抽真空,把凝胶取出后应该用含有溴乙啶的溶液浸泡,观察转膜效果)-<br /> 7)烘烤膜:120℃ 30分钟 (或将膜RNA面朝下UV照射3-5分钟)。(注:可以在此步进行斑点杂交,以检验后边的步骤,在烤膜时应该用两张干净的滤纸包住,以防止膜在高温下转曲,发生交叉污染)<br /> 2、预杂交:加入杂交液,50℃ (或42℃)水浴3hr或过夜。(注:可以用68℃进行预杂交,而且应该预热杂交液,在预杂交和杂交时转速不能太快,大约8转/min,而且转膜面向内使之洗到膜)<br /> 3、杂交(2.5ml/100cm2):在3ml杂交液中加入探针(10-100ng/ml),开始杂交16小时。(取标记探针约25ul,沸水加热10min,迅速冰浴,加入杂交液中混匀,并避免起泡,50℃ 或42℃水浴或过夜,探针量应该提高在0.5-3ug,注意杂交液一定要回收,可以反复利用)<br /> 4、洗膜、检测:<br /> 洗液Ⅰ (50ml/100cm2) 5min×2次<br /> 洗液Ⅱ (50ml/100cm2) 15min×2次,振荡洗涤 (68℃)<br /> washing buffer 2min,换袋<br /> blocking buffer(100ml/100cm2) 30min<br /> 150 mu/ml of anti-DIG-AP in blocking solution(稀释1:5000) 50ml, 30min<br /> washing buffer (100ml/100cm2) 15min×2次(除去未结合的Ab)<br /> detection buffer 20ml, 2-5 min(平衡膜)<br /> color solution (detection buffer 10ml + 管9 200ul,新鲜配制) 30min (5min-过夜)。显色期间不能晃动。显色完后,把膜浸入水中10分钟,干燥后保存。(注:应该放在黑暗密闭的容器中,避光、防止震荡)<br /> <br /> *含标记DNA的杂交液可于-20℃保存并重复使用。使用前将杂交液100℃沸水浴10分钟。<br /> *二次杂交:将已杂交过的膜浸于二甲基甲酰胺中,50-55℃水浴脱色数分钟,用DEPC水漂洗后;除去探针:formamide,50%(v/v),50mM Tris-HCl(pH8.0),SDS 1%(w/v),将膜完全浸于液体中,68℃孵育1小时。在水中浸洗膜,然后置2×SSC。干燥膜或直接用于杂交。<br /> *Quantification procedure: 用dilution buffer(管3)稀释试剂盒中DIG-标记的管1对照DNA(1:5,1:50,1:500,1:5000)与靶DNA探针(1:1,1:10,1:100,1:1000,1:10000),将其变性(沸水浴后迅速冰浴),各取1ul点到尼龙膜上,将膜于80℃ 2h或UV照射3分钟,按标准步骤进行染色、显色、照相。 </font>

提问
扫一扫
丁香实验小程序二维码
实验小助手
丁香实验公众号二维码
关注公众号
反馈
TOP
打开小程序