小鼠肝基因组DNA制备的实验方法
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DNA以核蛋白形式存在于细胞核中,制备DNA的原则是既要将DNA与蛋白质、脂类和糖类等分离,又要保持DNA分子的完整。蛋白酶K及链霉蛋白酶E的应用使这两个原则得到了保证。
蛋白酶K或链霉蛋白酶E均为广谱蛋白酶,其重要特性是能在SDS和EDTA存在下保持很高的活性。在匀浆后提取DNA的反应体系中,SDS可破坏细咆膜、核膜,并使组织蛋白与 DNA分子分离,EDTA抑制细胞中DNase活性,蛋白酶K或链霉蛋白酶E将蛋白质降解成小肽或氨基酸,使DNA分子完整地分离出来。再用酚、酚/氯仿抽提除去蛋白质,接着用氯仿抽提以除去DNA溶液中微量酚的污染。最后用无水乙醇沉淀DNA。为获得高纯度DNA,操作过程中常加入RNase除去RNA。获得高分子量DNA的关键是防止DNase降解DNA。故标本必须新鲜,在提取前细胞就保持完整,核、溶酶体等细胞器应没有明显破坏,提取DNA用的离心管等器皿及试剂应消毒。操作在4℃以下进行。
操作
1.组织DNA的提取
① 取小鼠新鲜肝组织,去除结缔组织,用剪刀剪成细小碎块
② 加10倍体积TE缓冲液,用玻璃匀浆器在冰浴中中速匀浆;将匀浆液转入10ml离心管以4000rpm离心10分钟,弃上清;加10倍体积TE洗一遍,以4000rpm离心10分钟,弃上清
③ 加适量TE稀释
④ 取400μl稀释液于1.5ml的Eppendorf管,缓慢加入10%SDS溶液,至终浓度0.5% (加20μl),摇匀直至溶液变粘稠
⑤ 加入Rnase(200μg/ml)至终浓度20ug/ml(42μl)混匀,置37℃保温60分钟(总体积 420μl)。
⑥ 加蛋白酶K(20mg/ml)至终浓度100ug/m1混匀(加21ul),于50℃保温3小时,并间歇搅动(总体积441μl)。
⑦ 将此溶液冷却至室温,加等体积饱和酚抽提,以10000rpm离心10分钟;取上清加1/2体积饱和酚,1/2体积氯仿/异戊醇抽提一次,以10000rpm离心10分钟;取上清,加等体积氯仿/异戊醇抽提一次,以10000rpm离心10分钟;加1/10体积5MKAc,加2倍体积无水乙醇充分混匀,以12000rpm离心10分钟
⑧ 加lml70%乙醇洗沉淀,以12000rpm离心10分钟
⑨ 待酒精挥发尽后加20ul TE溶解,4℃储存
2.电泳鉴定
取DNA样品2μl加上样缓冲液10μl (含溴酚蓝指示剂和甘油),在0.8%琼脂糖凝胶进行水平微型电泳,电压<5V/cm,时间2小时左右。电泳后取出凝胶,用0.5μg/ml的溴化乙锭染色20分钟,用紫外灯观察分析。
试剂及器材
1.试剂
蛋白酶K:称取20mg蛋白酶K溶于1ml消毒双蒸水中,-20℃备用。
RNase(牛胰):称取10mgRNase溶于1ml下列混合液中:10mmol/l Tris-HCl,pH8.0; 1mmol/L EDTANa2 pH8.0;50%甘油。
10%SDS溶液:称取10gSDS溶于100ml消毒双蒸水中,于65℃保温2小时,贮存室温备用。
1×TE缓冲液(pH8.0):10mmol/L Tris-HCl pH8.0;1mmol/LEDTANa2 pH8.0。配制后高压灭菌,4℃贮存。
1×TE饱和重蒸酚(pH8.0)
氯仿/异戊醇(24:1V/V)
10mol/LNH4AC,配制后高压灭菌,4℃贮存
无水乙醇(AR)
70%乙醇
2.器材
玻璃匀浆器;离心机;电泳仪;电泳槽;紫外透射反射分析仪