小鼠核转录因子p65(NF-kB p65)ELISA试剂盒 说明书
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小鼠核转录因子p65 ( NF - kB p65 )ELISA 试剂盒
原理
本实验采用双抗体夹心 ABC-ELISA 法。用抗小鼠 NF- kB p65单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的 NF- kB p65 与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠NF- kB p65 ,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的 Streptavidin 与生物素结合,加入底物工作液显蓝色,最后加终止液硫酸,在 450nm 处测 OD 值,NF- kB p65 浓度与 OD 值成正比,可通过绘制标准曲线求出标本中NF- kB p65 浓度。
试剂盒组成 ( 2-8 ℃保存)
酶标 板 (Coated Wells ) |
96 孔 |
酶标抗体工作液(Enzyme Conjugate ) |
12ml |
10×标本稀释液( Sample Buffer ) |
12ml |
20×浓缩洗涤液( Wash Buffer ) |
50ml |
标准品 (Standards ) : 10 ng/瓶 |
2 瓶 |
底物工作液(TMB Solution ) |
12ml |
第一抗体工作液( Biotinylated Antibody ) |
12ml |
终止液 (Stop Solution ) |
12ml |
准备试剂与收集血样
1. 收集标本:血清、血浆(EDTA )、细胞培养上清液、组织匀浆等尽早检测, 2-8 ℃ 保存48 小时;更长时间须冷冻( -20 ℃或 -70 ℃ )保存,避免反复冻融。
2. 标准品液配制:使用前加入0.5 ml 蒸馏水 混匀,配成 20ng/ml 的溶液 。 设标准管 8 管,第一管加标本稀释液 900ul ,第二至第八管加入标本稀释液 500ul 。在第一管中加入 20ng/ml 的标准品溶液 100ul 混匀后用加样器吸出 500ul ,移至第二管。如此反复作对倍稀释,从第七管中吸出 500ul 弃去。第八管为空白对照。
3. 10× 标本稀释液用蒸馏水作 1: 1 0 倍稀释( 示例: 1ml浓稀释液 +9ml 蒸馏水)。
4. 洗涤液:用重蒸水 1:20 稀释(示例:1ml 浓缩洗涤液加入 19ml 的重蒸水)
标本激活方法
1. 将450ul 标本稀释液加入到一支 1.5ml 进口聚丙烯管中 , 再加 10ul 血清或血浆标本。
2. 加20ul 1 N HC I ,盖紧,上下混匀。 2 - 8 ℃ 放置60± 2 分钟。
3. 加20ul 1 N NaOH, 盖紧,上下混匀。
4. 即用,或放-20/-70 ℃ 保存3 天。计算结果时乘 以稀释倍数 50 。 ( 注意:不同的标本NF- k B p65 的水平可能有较大差异,请根据实际情况灵活掌握稀释度)
5. 细胞培养上清或组织匀浆 10 倍稀释 (410ul 的标本稀释液+ 50ul 样本+ 20ul 的 1N HCI+20ul 的 1N NaOH) 。
检测程序
1. 加样:每孔各加入标准品或待测样品(已激活) 100ul ,将反应板充分混匀后置 37 ℃ 120 分钟。
2. 洗板:用洗涤液将反应板充分洗涤 4-6 次,向滤纸上印干。
3. 每孔中加入第一抗体工作液10 0ul 。将反应板充分混匀后置 37 ℃ 6 0 分钟。
4. 洗板:同前。
5. 每孔加酶标抗体工作液100ul 。将反应板置 37 ℃ 3 0 分钟。
6. 洗板:同前。
7. 每孔加入底物工作液100ul ,置 37 ℃ 暗处反应15 分钟。
8. 每孔加入100ul 终止液混匀。
9. 30分钟内用酶标仪在 45 0 nm 处测 吸光值。
结果计算与判断
1. 所有 OD 值都应减除空白值后再行计算。
2. 以标准品20 00 、100 0 、500 、 250 、 125 、 62.5 、 31.2 、 0 pg /ml 为横坐标, OD 值为纵坐标,在坐标纸上作图,画出标准曲线。
3. 根据样品 OD 值在该曲线图上查出相应 NF- kB p65 含量 ,再乘上稀释倍数即可 。
试剂盒性能
1. 灵敏度 : 最小的NF- kB p65 检测浓度小于 15 pg/ml。
2. 特异性: 可同时检测重组或天然的小鼠 NF- kB p65 。 不与 小鼠其它细胞因子有交叉反应。
3. 重复性:板内、板见变异系数均小于8.9%。
注意事项
1. 以上标准孔及待 测 样品均建议做复孔,每次测定应同时 做 标准曲线。
2. 洗涤过程 很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及 OD 值错误地升高。
3. 板条开封后剩余板条要再封好,保持 板条干燥 。
4. 本试剂盒宜置 4 o C冰箱保存。
5. 本试剂盒仅用于科研,不能用于临床诊断!