毕氏酵母感受态细胞制备的三种方法
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1、毕氏酵母 氯化锂转化法
(1)试剂
1M LiCl(用去离子蒸馏水配制 ，滤膜过滤除菌;必要时用消毒去离子水稀释)
50% PEG3350(Sigma P3640 用去离子蒸馏水配制，滤膜过滤除菌，用较紧的盖子的瓶子分装)
2mg/ml salmon sperm DNA / TE(10mM Tris-Cl, pH8.0, 1.0mM EDTA)-20℃保存
注：醋酸锂对毕氏酵母无效，仅氯化锂有效;PEG3350可屏蔽高浓度LiCl的毒害作用;
(2)感受态毕氏酵母的制备
接种Pachia pastoris到50ml YPD培养基中，30℃摇菌过夜(约24～28h)培养到OD值为0.8～1.0(约108 Cells/ml);
收获细胞，用25ml无菌水洗涤一次，室温下1500g离心10min;
重悬细胞于1ml 100mM LiCl溶液中，将悬液转入1.5ml离心管;
离心机最大速度离心15秒沉淀菌体，重悬菌体于400ul 100mM LiCl溶液中;
按50ul/管分装，立即进行转化;
注：不要将感受态酵母菌冰浴;
(3)毕氏酵母的转化
煮沸1ml鲑鱼精DNA 5min，迅速冰浴以制备单链担体DNA;
将感受态酵母菌离心，以Tips去除残余的LiCl溶液;
对于每一个转化，按以下顺序加入：
50% PEG3350 240ul
1M LiCl 36ul
2mg/ml 单链Salmon sperm DNA 25ul
5～10ug/50ul H2O 质粒DNA 50ul
剧烈旋涡混匀直至沉淀菌体完全分布均匀(约1min);
30℃水浴孵育30min;
42℃水浴热休克20～25min;
6000～8000rpm离心收集酵母菌体;
重悬酵母于1ml YPD培养基，30℃摇床孵育;
1～4h后，取25～100ul菌液铺选择性培养基平板，于30℃培养2～3天鉴定;
2、毕氏酵母PEG1000转化法
(1)试剂
缓冲液A：1.0M Sorbitol，10mM Bicine，pH8.35(sigma),3%(v/v)ethylene glycol
缓冲液B：40%(w/v)PEG1000(sigma)，0.2M Bicine，pH8.35
缓冲液C：0.15M NaCl，10mM Bicine，pH8.35
未污染的新鲜、试剂级DMSO，-70℃保存
注：
缓冲液A、B、C均用滤膜过滤，-20℃保存;
将DNA直接加在冻结的酵母细胞上是本实验的关键之处(即使在冰上解冻的待转化细胞，其摄取外源DNA的能力也在解冻过程中迅速下降;如进行多样品的转化，建议按6样品/组进行);
(2)待转化毕氏酵母的制备
接种环接种Pachia pastoris于YPD平板，30℃培养2d;
挑取单克隆酵母菌株于10mlYPD培养基中，30℃振荡培养过夜;
取步骤2中小量菌液接种到100mlYPD培养基中振荡培养，待其OD值从0.1升到0.5～0.8;
室温下3000g离心收集酵母菌体，50ml缓冲液A洗涤一次;
重悬菌体于4ml缓冲液A中，按0.2ml/管分装于1.5ml的离心管中，每管加入11ulDMSO，混合后迅速于液氮中冷冻，
-70℃保存
(3)毕氏酵母的转化
将约50ug线性化质粒DNA溶于20ul TE或水中，直接加于冻结的酵母细胞中;加入担体DNA(40ug变性超声线性化鲑鱼精DNA)以获得最大转化率;
37℃水浴孵育5min，中间混合样品1～2次;
取出离心管，加入1.5ml缓冲液B，彻底混匀;
30℃水浴孵育1h;
室温下2000g离心10min，去除上清液，菌体沉淀重悬于1.5ml缓冲液C中;
离心样品，去除上清液，轻微操作将样品重悬于0.2ml缓冲液C中;
将所有转化液铺于选择性平板，于30℃孵育3～4天后，鉴定;
3、毕氏酵母电转化法
(1)E.coli TOP10F’感受态细胞的制备
取10ul TOP10F’菌液，接种于200ml LB液体培养基中活化培养，37℃，200 rpm，16～18小时。取100ul菌液接种于200ml液体LB培养基中。
37℃，200 rpm，培养16～18小时。
灭菌500 ml离心管，4℃，4000 rpm，20 min。得菌体沉淀。弃上清，菌体用10%甘油重悬并洗涤。重复洗涤3次。
第三次离心后，弃绝大部分上清，留下约1ml 液体用于重悬菌体。
从制得得感受态细胞中，取200ul于灭菌EP管中，加入连接反应产物5ul，混匀，不要产生气泡，在冰上放置5min。
将混匀后得200ul菌液移入电击杯中。
使用电击穿孔仪进行转化，设置为电压 2500 V，时间 5 ms。
电击后，往电击杯中加入 800ul SOC培养基，冲洗出菌体，转移至灭菌1.5 ml EP管中。37℃，150 rpm ，轻摇45～60 min。
取全部均匀涂布于含 Zeocin 25 ug/ml 的LLB-Zeocin平板上，正放，待涂布液不在流动，37℃ 培养12～16小时。
(2)线性化质粒DNA对Pichia pastorisGS115的转化
取新鲜制备的(或-70℃冻存的)感受态细胞置于冰浴中，使其完全解冻;
1)将100μl菌体移出至一新的无菌Eppendorf管中，加入5-20μg线性化质粒(5～10μl)，轻弹混匀，尽数吸出转移到0.2cm型的电穿孔转化杯中;
2) 转化杯置于冰浴中5～10分钟，保持低温。
3) 电穿孔转化电击条件：电压：1500V;电阻：400Ω;电容：25μF;脉冲时间：10mS;一次电击。
4) 电击后，马上在电击转化杯中加入1ml 4℃预冷的1M的山梨醇溶液，用微量移液枪吹打均匀，置于冰浴中;
5) 取30℃烘至表面半干的MD培养基平板，在超净工作台上无菌操作涂布平板，400μl/板
