蛋白分离的缓冲液系统比较

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解离/非解离native缓冲液系统

很多应用蛋白质聚丙烯酰胺 凝胶区带电泳（zone electrophoresis）的研究使用一种缓冲液系统，该系统的设计把所有的蛋白质分解成单一多肽亚单位。最常用的解离试剂是十二烷基硫酸钠（SDS）,一种离子型去污剂，它通过包围在多肽骨架的周围变性蛋白质。在包含有过量的SDS和巯基试剂的蛋白质样品，100℃加热时，二硫键被打开，蛋白质完全解离成它的亚单位。在这些情况下，大部分的多肽以一个恒定的重量比率（1.4g SDS:1g多肽）结合多肽。与去污剂所提供的负电荷相比较，多肽固有的电荷变得微不足到。因而，根据多肽的大小，相同大小的SDS-多肽复合物基本上具有相同的负电荷、形状和凝胶中的迁移率。这种方法简洁而快速，加之只需要微克量蛋白这一事实，使SDS-PAGE成为最广泛使用的，用来确定多肽样品分子量的方法。由于几乎任何来源的蛋白质很容易被SDS溶解，所以这种方法通常都可以适用。

与之相反，用来进行非解离native电泳的非解离native缓冲液系统，则设计用来分离蛋白质混合物，而亚单位之间的相互作用、蛋白质构象和生物学活性被保留。在非解离native缓冲液系统中，蛋白质的分离基于它们的荷/质比率。

连续缓冲液系统

在连续缓冲液系统中，凝胶的缓冲液和电泳缓冲液的组成基本上是相同的。它们由单一的分离胶组成，而且全部的样品、胶和电极槽使用相同pH的同样的缓冲液离子。

在连续缓冲液系统中，分子电荷密度和胶孔大小是仅有的影响分子的堆积和条带的锐度的因素，。使用连续系统时，蛋白质在样品孔中比在凝胶中移动的速度更快。在缓冲液和分离胶的交界面，分子移动减慢，样品浓缩条带形成。这种浓缩的方法有一定的局限，尤其是分离的分子在大小上变化较大。小分子 在溶液中运动和在凝胶中的运动没有太大的差别，因而在锐度方面不如对于大分子有利。

不连续缓冲液系统

不连续缓冲液系统，凝胶和电极槽中使用不同的缓冲离子和pH值，将样品加入到位于小孔分离胶的上面、非限制的大孔胶中，该胶称为浓缩胶。

不连续缓冲液系统的主要优势在于，相对较大体积的稀释的样品可以应用到胶中，而且分辨率也比连续液系统获得的要高。蛋白质在通过大孔的浓缩胶时，浓缩或堆积成狭窄的条带：在小孔的分离胶中和给定的条件下，去堆积或分离，直接的结果是分辨率的增高。Ornsten和 Davis描述的通过不连续系统产生细的起始条带（1，2）。

离子的迁移和蛋白的堆积

离子的迁移依赖于分子 电荷的密度和电压梯度，在给定的pH值下，只有一部分蛋白会被分离，这些分子的移动将取决于有效迁移和电压梯度，因而，如果电压和有效迁移的乘积相等，移动慢的离子可以象移动快的离子移动的一样快。

在Ornsten和 Davis系统，样品和堆积胶包含Tris-HCl缓冲液，而上电极槽包含Tris-Glycine 缓冲液。在样品缓冲液和堆积胶的pH值（pH6.7）时，Glycine弱离子化，因而移动较慢。Chloride完全离子化，具有较高的迁移率，而蛋白的迁移介于甘氨酸和氯离子之间。一旦加以电压，氯离子（先导）离子迁移离开甘氨酸（尾随）离子，产生一个低电导、高电压梯度和高pH区带。这个区带加速了甘氨酸的迁移，以使它跟上氯离子。随着甘氨酸/氯离子边界移动通过样品和堆积胶，前面的蛋白迅速地被快速迁移的氯离子超过，在正在移动界限的后面，蛋白比甘氨酸移动速度快，因此，移动的边界处理这些蛋白，有序地浓缩它们到移动减慢的薄区带。

一旦蛋白质被堆积后什么会发生？

首先，堆积蛋白可能跟在移动界面或染料前沿后面，通过低浓度胶，保持堆积或不分离。第二，蛋白可能从移动界面去堆积或分离。Ornstein和Davis描述了两种不同的去堆积的方法。去堆积能够被完成通过：a 堆积形成后减慢蛋白的移动速度，或b 一旦蛋白已经被堆积，加速后随离子的泳动速度。

第一种方法，在较高浓度的分离胶上制备低浓度的分离胶，当堆积蛋白进入高浓度分离胶中，它的移动减慢，因而要比甘氨酸离子移动速率慢。一旦这种情况发生，蛋白摆脱堆积作用，可以在相同的、较低的、局部的电场力作用下移动，就象在连续胶中一样。

第二种去堆积的方式是改变pH值，从而加快尾随离子的移动速度。 对于甘氨酸/氯系统，浓缩胶制备时，甘氨酸区带要调整到比分离胶低的pH值。当甘氨酸进入到高pH值的分离胶时，它的净负电荷将增加它的有效移动。结果，甘氨酸开始赶超一些蛋白，最后直接跟在氯离子的后面移动，从而引起蛋白的分离。

Ornstein和Davis通过在Tris-chlorde/Tris-glycine不连续缓冲系统中，用pH值为6.8的低浓度浓缩胶覆盖pH值为8.8的高浓度分离胶，合并了这两种去堆积的方法。以后Laemmli应用这种系统到SDS蛋白电泳，基本上保持了相同的特点（3）。