提问
提问
我要登录
|免费注册
点赞
收藏
wx-share
分享

T细胞尼龙毛柱分离法

互联网

2328

<font><font><font>在研究体内及体外的免疫系统时,分离淋巴细胞群是一个关键步骤。因为现在市场上并没有针对</font> <font>B</font> <font>细胞的特异性抗血清,所以分离淋巴细胞中的</font> <font>T</font> <font>细胞并不是十分方便。</font> <font>T</font> <font>细胞尼龙毛分离法利用了尼龙毛对</font> <font>B</font> <font>细胞的亲和力,从而使</font> <font>T</font> <font>细胞在没有严重损伤的情况下达到的足够的纯度。因为这个方法不像流式和磁珠费用昂贵,而且操作简便,所需要的条件也不高,是一种非常实用的方法。</font> </font><br /> <font><font>(</font> </font> <font><font>在此我向各位解释一下,现在分离</font> <font>T</font> <font>细胞的方法主要是三种,流式,磁珠法,尼龙毛法。与前两种方法相比,尼龙毛法的优势在于无需特定的设备仪器,一般的实验室均有条件操作;价格相对低廉;可以进行大量样本操作。</font> </font> <font><font>)<br /> </font> <font>首先要指出的是实验中所使用的是分离</font> <font>T</font> <font>细胞专用的尼龙毛</font> <font>(Nylon Fiber)</font> <font>,不是化工上的尼龙纤维,曾经有人问过我这种问题,如果你买错了,可是做不出来的!其次,现在市面上的尼龙毛也是良隽不齐,也有同仁反应买到的尼龙毛加入缓冲液以后成了一团糨糊,根本没法使用,这个问题就要靠各位的慧眼了。</font> </font><br /> <font><font>现在市面上有尼龙毛填料,也已经有了商品化的尼龙毛柱子,这两者的区别主要是以下两点:</font> </font><br /> <font><font>1.</font> </font> <font><font>商品化的柱子的填料量是已经定好的,有一个确定的上样量范围。而自己买填料装柱可以控制填料量,也就是可以控制上样量,这对于样本量非常少,或是样本量非常大的实验需求非常合适。</font> </font><br /> <font><font>2.</font> </font> <font><font>商品化的柱子已经经过了无菌处理</font> <font>(</font> <font>一般是辐射灭菌</font> <font>)</font> <font>,而自己装柱当然就要自己灭菌了。</font> </font><br /> <font><font>3.</font> </font> <font><font>商品化的柱子在实验的重复性上有着绝对的优势。自己装的柱子在填料的处理和装柱的松紧等方面不容易控制,差异性的控制就看你的实验技巧了。</font> </font><br /> <font><font>操作方法:</font> </font><br /> <font><font>1.</font> </font> <font><font>秤取</font> <font>1.5g</font> <font>尼龙毛装入</font> <font>20-30ml</font> <font>玻璃或一次性注射器内</font> <font>(</font> <font>要可以灭菌的</font> <font>)</font> <font>,填料的体积控制在</font> <font>15</font> <font>毫升左右</font> <font>(</font> <font>注射器上有标记,所以还是比较好控制的</font> <font>)</font> <font>,因为尼龙毛的松紧关系到</font> <font>T</font> <font>细胞的回收率,所以要特别注意。注射器下端配接</font> <font>5</font> <font>厘米</font> <font>左右长的带有弹簧夹的橡皮管。</font> </font><br /> <font><font>2. </font> </font> <font><font>加入大量的</font> <font>PBS</font> <font>平衡柱子后,用铝箔包裹,并置于适当的容器内,高压灭菌</font> <font>15</font> <font>分钟。</font> </font><br /> <font><font>(商品化尼龙毛柱以上步骤可以省略,经过无菌</font> <font>PBS</font> <font>平衡后直接进行下列步骤。)</font> </font><br /> <font><font>3. </font> </font> <font><font>灭菌的尼龙毛柱垂直固定后放于超净台内,顶部以铝箔覆盖,避免污染。</font> </font><br /> <font><font> 4. </font> <font>橡皮管,弹簧夹用无水酒精消毒后接注射器下端,打开弹簧夹调节流速在大约</font> <font>3-4ml/min</font> <font>。</font> </font><br /> <font><font>5.</font> </font> <font><font>首先,加入</font> <font>3-4</font> <font>倍柱体的无血培养基平衡;随后,之后加入相同体积的含有血清的培养基平衡(上述培养基都要预热),最后等培养基页面接近柱填料页面时,关闭弹簧夹。</font> </font><br /> <font><font> 6. </font> <font>样本细胞悬浮液浓度控制在</font> <font>5×108cells/ml</font> <font>的,上样量一般是</font> <font>1/3-1/5</font> <font>柱体积</font> <font>(</font> <font>商品化的柱子一般都有推荐上样量</font> <font>)</font> <font>。样品加入之后,再加入少量培养液,然后关闭弹簧夹。</font> </font><br /> <font><font>7. </font> </font> <font><font>柱上覆盖铝箔,移置于消毒过的容器中,</font> <font>37</font> <font>℃</font> <font>孵育</font> <font>1</font> <font>小时。此过程中柱子必须要保持垂直状态。</font> </font><br /> <font><font>8. </font> </font> <font><font>从培养箱中拿出柱子,置于超净台内,除去铝箔。接上按照</font> <font>4.</font> <font>中的方法消毒的弹簧夹和橡皮管,加入适当体积经</font> <font>37</font> <font>℃</font> <font>预热的培养基,打开弹簧夹控制流速在</font> <font>3-4 mL/min</font> <font>,流出约</font> <font>5ml</font> <font>之后,流出的培养液基变得不透明,此时其中含有</font> <font>T</font> <font>细胞,收集这一部分培养基。</font> </font><br /> <font><font>9. </font> </font> <font><font>基本上何时结束收集取决于流出液体中细胞的浓度,实际上,收集的量达到一个柱体积时就可以停止收集,因为即使收集更多的量,回收率几乎不会增加。</font> </font><br /> <font><font>10 </font> </font> <font><font>。参考数据:</font> </font> </font>

<font><font><font>样本:小鼠脾脏(</font> <font>T</font> <font>细胞含量在</font> <font>30-40%</font> <font>,</font> <font>B</font> <font>细胞含量在</font> <font>55-60%</font> <font>)</font> </font> </font>

<font><font><font>细胞回收率:</font> <font>13-25%</font> </font> </font>

<font><font><font>B</font> <font>细胞污染率:小于</font> <font>15%</font> </font> </font>

<font><font><font>样本:大鼠脾脏(</font> <font>T</font> <font>细胞含量在</font> <font>30-35%</font> <font>,</font> <font>B</font> <font>细胞含量在</font> <font>55-65%</font> <font>)</font> </font> </font>

<font><font><font>细胞回收率:大于</font> <font>25%</font> </font> </font>

<font><font><font>B</font> <font>细胞污染率:小于</font> <font>15%</font> </font> </font>

<font><font><font>样本:人或兔外周血</font> </font> </font>

<font><font><font>细胞回收率</font> <font> : 20-30% (</font> <font>人</font> <font>)</font> <font>;</font> <font>25-35% (</font> <font>兔</font> <font>)</font> </font> </font>

<font><font><font>B</font> <font>细胞污染率:小于</font> <font>5% (</font> <font>人、兔</font> <font>)</font> </font> </font>

<font><font><font>(注)收集粘附于尼龙毛上的细胞时,将</font> <font>T</font> <font>细胞收集完毕后的尼龙毛在无菌操作的状态下取出,转移到适当的容器中,用镊子小心的将尼龙毛松开,粘附的细胞可以洗到培养基中。或者将注射器芯插入注射器内,通过压力使的粘附的细胞随着液体流出。</font> </font> </font>

(责任编辑:大汉昆仑王)
提问
扫一扫
丁香实验小程序二维码
实验小助手
丁香实验公众号二维码
关注公众号
反馈
TOP
打开小程序