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细胞计数及活力测定方法

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一、原理

培养的细胞在一般条件下要求有一定的密度才能生长良好,所以要进行细胞计数。计数结果以每毫升细胞数表示。细胞计数的原理和方法与血

细胞计数相同。

计算细胞数目可用血球计数盘或是Coulter counter 粒子计数器自动计数。 血球计数盘一般有二个chambers,每个chamber 中细刻9 个1 mm正方形再细刻16 个小格,深度均为0.1 mm。当chamber 上方盖上盖玻片后,每个大正方形之体积为1 mm2 x 0.1 mm=1.0 x 10-4 ml。使用时,计数每个大正方形内之细胞数目,乘以稀释倍数,再乘以104,即为每ml 中之细胞数目。在细胞群体中总有一些因各种原因而死亡的细胞,总细胞中活细胞所占的百分比叫做细胞活力,由组织中分离细胞一般也要检查活力,以了解分离的过程对细胞是否有损伤作用。复苏后的细胞也要检查活力,了解冻存和复苏的效果。存活测试之步骤为dye exclusion,利用染料会渗入死细胞中而呈色,而活细胞因细胞膜完整,染料无法渗入而不会呈色。一般使用蓝色之trypan blue 染料,如果细胞不易吸收trypan blue,则用红色之Erythrosin bluish 。利用细胞内某些酶与特定的试剂发生显色反应,也可测定细胞相对数和相对活力。

二、仪器、用品与试剂

0.4 % w/v 台盼兰trypan blue (GibcoBRL 15250-061)

Erythosin bluish stain

取0.1 gram Erythrosin bluish (Sigma E-9259) 及0.05 gram preservative methyl paraben (Sigma H-3647) 溶于100 ml Ca++/Mg++ free saline血球计数盘及盖玻片(Hem℃ytometer and coverslip)计数器(counter)低倍倒立显微镜

粒子计数器(Coulter counter, Coulter Electronics)

三、操作步骤

(一)细胞计数

3.1. 取50ml 细胞悬浮液与50ml trypan blue (or Erythrosin bluish) 等体积混合均匀于1.5ml 小离心管中。

3.2. 取少许混合液(约15ml) 自血球计数盘chamber 上方凹槽加入,盖上盖玻片,于100 倍倒立显微镜下观察,活细胞不染色,死细胞则为蓝色 ( 或红色- Erythrosin bluish) 。

3.3. 计数四个大方格之细胞总数,再除4,乘以稀释倍数(至少乘以2,因与trypan blue等体积混合),最后乘以104 ,即为每ml 中细胞悬浮液之细胞数。若细胞位于线 上,只计上线与右线之细胞(或计下线与左线之细胞)。

3.4. 若不用血球计数盘,可用Coulter counter 作自动计数,惟无法辨别死细胞或活细 胞。

然后按下式计算:

细胞数/ml=4大格细胞总数x 2/ 4×10000

注意:镜下偶见由两个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算,若细胞团占 10%以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液。

(二)细胞活力

1、将细胞悬液以 0.5ml加入试管中。

2、加入 0.5ml 0.4%台盼兰染液,染色 2一 3分钟。

3、吸取少许悬液涂于载玻片上,加上盖片。

4、镜下取几个任意视野分别计死细胞和活细胞数,计细胞活力。

死细胞能被台盼兰染上色,镜下可见深兰色的细胞,活细胞不被染色,镜下呈无色透明状。

活力测定可以和细胞计数合起来进行,但要考虑到染液对原细胞悬液的加倍稀释作用 。

范例:

T75 monolayer culture 制成10ml 细胞悬浮液,取0.1 ml 溶液与0.1ml trypan blue 混合均匀于试管中,取少许混合液加入血球计数盘,计数四大方格内之

细胞数目。

活细胞数/方格:55 ,62, 49, 59

死细胞数/方格:5, 3, 4, 6

细胞总数= 243

平均细胞数/方格= 60.75

稀释倍数= 2

细胞数/ml:60.75 x 104 x 2 = 1.22 x 106

细胞数 /flask: 1.22 x 106 x 10ml = 12.2 x 106

存活率:225/243﹦92.6 %

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(三)MTT法测细胞相对数和相对活力

活细胞中的琥珀酸脱氢酶可使 MTT分解产生兰色结晶状甲赞颗粒积于细胞内和细胞周围。其量与细胞数呈正比,也与细胞活力呈正比。

l、细胞悬液以 1000rpm离心 10分钟,弃上清液。

2、沉淀加入 0.5-1ml MTT,吹打成悬液。

3、37℃下保温 2小时。

4、加入 4—5 ml酸化异丙醇(定容)。打匀。

5、1000 rpm离心,取上清液酶标仪或分光光度计 570nm比色,酸化异丙醇调零点。

注意:MTT法只能测定细胞相对数和相对活力,不能测定细胞绝对数。

附:

1、0.4%台盼兰染液配制:

台盼兰 0.4克 加双蒸水至 100 ml。Cbeqe

2、MTT配制:

MTT 0.5克,溶于 100 ml的磷酸缓冲液或无酚红的基础液中。4℃下保存。

3、酸化异丙醇配制:

异丙醇中加入 HCl使最终达 0.04mol/L。

(责任编辑:大汉昆仑王)
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