心血管活动的神经体液调节

[实验目的]
　　学习记录哺乳动物动脉血压的直接测定方法，并观察神经-体液因素对心血管活动的调节。
[实验原理]
　　在正常生理情况下，心血管活动受神经、体液和自身机制的调节。
　　心脏受交感神经和副交感神经的支配。心交感神经兴奋时，使心率加快、心肌收缩力加强，心内兴奋传导加快，心输出量增加、动脉血压升高。心迷走神经兴奋时，使心率减慢、心房肌收缩力减弱、房室传导减慢，从而使心输出量减少、动脉血压下降。在神经调节中以颈动脉窦-主动脉弓的减压反射尤为重要，当动脉血压升高时,压力感受器发放冲动增加,通过中枢反射性引起心率减慢、心肌收缩力减弱、心输出量下降、血管舒张和外周阻力降低，使血压降低。反之，当动脉压下降时，压力感受器发放冲动减少，神经调节过程又使血压回升。支配血管的交感缩血管神经兴奋时，使血管收缩、外周阻力增加、动脉血压升高。
　　家兔的压力感受器的传入神经在颈部从迷走神经分出,自成一支，称为减压神经，其传入冲动随血压变化而变化。
　　心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺素等体液因素的调节。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。关键取决于心、血管壁上哪一种受体占优势。肾上腺素对α与β受体均有激活作用，去甲肾上腺素主要激活α受体而对β受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压升高，但对心脏的作用要比肾上腺素弱。
[实验对象]
　　家兔。
[实验药品]
　　生理盐水，20%氨基甲酸乙脂（或3%戊巴比妥钠），肝素（500 U·ml ^-1 ），1: 10000肾上腺素，1: 10000去甲肾上腺素，1: 10000乙酰胆碱。
[ 仪器 与器械]
　　计算机生物信号采集处理系统（或二道生理记录仪、刺激器），兔手术台，手术器械一套，气管插管，动脉夹，动脉套管、血压换能器，保护电极，棉线，纱布，棉球、注射器（50、10、2 ml），支架，双凹夹。 [实验方法与步骤]
　　1. 实验准备：
　　（1） 麻醉和固定： 家兔称重后，耳缘静脉缓慢注射20％氨基甲酸乙酯（5 ml·kg ^-1 ）或3%戊巴比妥钠（1 ml·kg ^-1 ）进行麻醉。当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。将麻醉的家兔仰卧位固定于兔手术台上。
　　图7.10-1 兔左侧内脏大神经的解剖位置
　　（2）分离颈部神经、血管和插气管插管 颈部剪毛，沿颈部正中线切开皮肤5~7 cm，用止血钳钝性分离皮下组织及浅层肌肉，暴露和分离气管；分离左、右两侧颈总动脉（左颈总动脉尽量分离长些，以做动脉插管用。当向头端追索到甲状软骨上缘，可见到左颈动脉分支为颈外和颈内动脉，在颈内动脉基部有一膨大处，为颈动脉窦。）；分离右侧的迷走神经、交感神经和减压神经。在分离的气管、颈总动脉及神经下方各穿一不同颜色的线备用(见3.7.4)。并在减压神经下放一钩状记录电极，实验过程中将电极悬空（但不要拉得过紧）。将神经周围的皮肤提起做一皮兜，在神经表面滴上38℃液体石蜡，以防止神经干燥，并起到绝缘效果。
　　（3）进行气管插管（见3.7.4）
　　（4） 分离内脏大神经（此步也可放在刺激内脏大神经前进行）： 将动物右侧卧位，在腰三角作一长4~5 cm的斜行切口，逐层分离至腹膜处，从左侧腹后壁（或沿腹中线切开皮肤）找到左肾，并将左肾向下推压，在其右上方可见一浅黄色黄豆粒大小的肾上腺。沿肾上腺上方可见内脏大神经（图7.10-1），小心分离主干，在其下方穿一丝线，并安放好保护电极备用。
　　（5） 插动脉插管 ：做插管手术前经耳缘静脉注射肝素（500 U·(kg体重)-1），在左侧颈总动脉插入动脉插管(见3.7.4)。
　　2． 连接实验装置：
　　（1）二道生理记录仪 将血压换能器固定在支架上，并与二道生理记录仪的血压放大器输入端相连。调整记录仪，对血压放大器定标。校正选择调至13.3 kPa（100 mmHg）,灵敏度置于50，记录笔上移2 cm。