组织切片制备及染色技术

（1）取材与固定：切取组织时应使用锋利的刀、剪，切取组织块时，从刀的根部开始向后拉动切开组织。组织块的厚度约为0.2~0.3cm，大小为1.5cm x 1.5cm x 0.3cm 为宜。取好的组织块用10%福尔马林溶液固定24~48h。

（2）包埋：先经梯度乙醇脱水后用二甲苯透明，然后入溶融的石蜡中浸透每次30min，共3 次；再包埋。

（3）切片：包埋好的石蜡块即可进行切片；切片的厚度为5μm 左右。

（二）苏木精－伊红（hematoxylin and eosin,HE）染色方法：

（1）脱蜡：主要用二甲苯脱蜡。

（2）梯度乙醇水化。

（3）自来水冲洗。

（4）苏木精染色：水化后的切片放入苏木精染液中浸5~20min，染细胞核。自来水冲洗3~5min。

（5）1％盐酸乙醇分化5~30s。自来水冲洗1~3min。

（6）弱碱性水溶液返蓝30s~1min。自来水充分冲洗5~10 分钟。

（7）伊红染色：充分水化后的切片直接入伊红染色液中，染细胞质5~15min 左右。

（8）梯度乙醇脱水。

（9）二甲苯透明。

（10）中性树胶封片。

二、组织化学及免疫组织化学技术

（一）组织化学（histochemistry）：一般称为特殊染色，基本原理是通过应用某些能与组织细胞化学成分特异性结合的显色试剂，定位地显示组织细胞的特殊化学成分并保持原有的形态学改变，对一些代谢性疾病的诊断具有一定的参考价值。通过光镜或电镜观察，可以检测组织切片内的蛋白质、糖类、脂类、酶类、核酸与某些金属元素等。

1.过碘酸雪夫氏染色（periodic acid-schiff stain，PAS 染色）：过碘酸是一种氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1.2 乙二醇基使之变为二醛，醛与Schiff 氏试剂结合，形成红色的取代色素而得到定位。PAS 染色可显示糖原、中性黏液物质、基底膜、软骨、垂体、霉菌及寄生虫等物质。是广泛应用的染色方法。在肾小球肾炎时PAS 染色可显示基底膜和系膜区的改变。 免疫学实验技术论坛   http://bbs.bbioo.com/forum-140-1.html

染色方法：

（1）切片按常规脱蜡水洗，再用蒸馏水洗涤。

（2）0.5%~1％过碘酸水溶液氧化5~10min。

（3）蒸馏水充分洗涤，至少3 次。

（4）Schiff 氏试剂染10~30min。

（5）倾去染液后，直接用亚硫酸冲洗液处理切片3 次，每次2 min，以达到分化。

（6）自来水冲洗5~10 min，使之显现出红色。然后蒸馏水洗1 次。

（7）明矾苏木精染核，自来水充分洗涤。

（8）95%乙醇及无水乙醇脱水、二甲苯透明、中性树胶封固。

结果判定：PAS 阳性物质呈鲜紫红色，其它组织淡粉红色，细胞核呈浅蓝色。

2.结缔组织的染色方法

一般所说的结缔组织是指纤维性结缔组织而言，其结构特点是细胞间质内基质外含有较多的纤维成分，主要是胶原纤维、弹性纤维和网状纤维，我们仅简述这三种纤维的常见染色方法。

（1）Mallory 三色染色法：常用于判定多种组织、器官的病变程度及修复情况，区分肿瘤组织中的纤维成分与平滑肌。

染色步骤：

①中性甲醛液固定组织，石蜡切片，常规脱蜡至水。

②重铬酸钾液10min。

③蒸馏水冲洗2min，蒸馏水2 次。

④酸性复红液2min，蒸馏水稍洗。

⑤苯胺蓝液20min，95%乙醇快速分化。

⑥直接用无水乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。

结果判定：胶原和网状纤维呈蓝色。

（2）Van Gieson 苦味酸酸性复红法：可以显示组织、器官的损伤、修复及硬化情况，

特别是用于鉴别肿瘤组织中的胶原纤维与平滑肌纤维，可为诊断提供重要依据。