DNA抽提指南
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按照RNA分离操作方案在完全移去水样层后,匀浆中的DNA存在于中间层和苯酚层中也可以被分离出来。在沉淀和多次洗脱后,DNA溶解在8 mM NaOH中。用TRIZOL试剂从组织和培养细胞中完全回收的DNA可以用来做样品中DNA含量的测定。同时抽提的基因组DNA可以用于对Northern analysis的结果进行标准化,因为DNA变异程度比总RNA或组织重量要小。[由于来源的不同,所得到的DNA沉淀在进一步应用前可能需要额外的纯化步骤(例如苯酚抽提等等)。]
实验所需但试剂未提供的物品:
* 酒精
~undefined 0.1 M柠檬酸钠(用10%酒精配制)
~undefined 75%酒精
8 mM NaOH
如无例外,以下操作均应在15�30℃下完成。
1.DNA的沉淀
移除中间层上残余的水样层,用酒精从中间层和苯酚层中沉淀DNA。按最初匀浆化时每1 ml TRIZOL加0.3 ml的无水乙醇,反复颠倒来混合样品。然后将样品置于15�30℃下2�3分钟,再在2�8℃下以不超过2,000×g的离心力离心5分钟沉淀DNA。
小心移除水样层对抽提的DNA的质量至关重要。
2. DNA的洗脱
移除离心后苯酚层中的上清液,如有必要,可以将其保留用于抽提蛋白。用0.1 M柠檬酸钠(用10%酒精配制)洗涤DNA沉淀两次。按最初匀浆化时每1 ml TRIZOL加1 ml柠檬酸钠溶液。每次洗涤时洗涤液要和DNA沉淀在15�30℃下作用30分钟(期间周期性混匀)再在2�8℃下以2,000×g的离心力离心5分钟。在两次洗涤完成后,用75%的酒精重悬DNA沉淀(每1 ml TRIZOL加1.5�2 ml75%酒精),在15�30℃下放置10�20分钟(期间周期性混匀)然后再在2�8℃下以2,000×g的离心力离心5分钟。
对于较大的DNA沉淀(> 200 μg)或样品中含有较多的非DNA物质需要用0.1 M柠檬酸钠(用10%酒精配制)溶液再洗涤一次。[ www.bbioo.com]
3.DNA的再溶解
在开口的试管中空气干燥DNA5�10分钟。(不要用离心干燥;它会使得DNA极难溶解。)用8m M的NaOH溶解DNA,大致的比例为0.2�0.3 μgDNA/μl。一般来说,每107个细胞或每50�70 mg组织要加300�600 μl的8m M的NaOH。用弱碱再溶解DNA是高度值得推荐的,因为抽提的DNA在水或是Tris缓冲液中都不能很好再溶解。8m M的NaOH的pH值只有~9,一旦DNA溶于其中后可以很容易用TE缓冲液或HEPES再调整其pH值。在本步骤中,DNA样品(尤其是来自组织的样品)可能含有一些不溶解的胶样物质(细胞膜碎片等)。以>12,000×g的离心力离心10分钟来除去那些不溶的物质。将含有DNA得上清液转移到一新的试管中。溶于8 mM NaOH中的DNA可以在4℃下放置过夜;如果是长期保存,样品中还应该用HEPES将pH值调到7�8(见表)并加入1 Mm的EDTA。H值调整好后,dna可以保存于4℃或�C20℃。
DNA的定量及预期的产量
取一小份溶于8 mM NaOH中的DNA样品,以适当比例和水混合并测量混合液A260值,以双链DNA的A260值计算DNA含量。每一A260单位相当于50μg双链DNA/ml。若以细胞数分析其相应的DNA产量,大致遵循以下比例:每1×106个分别来源于人,大鼠,小鼠的二倍体细胞分别对应于7.1μg, 6.5μg,和5.8μgDNA。
应用:
通过PCR扩增DNA:
在DNA再溶于8mM NaOH后,用0.1 M的HEPES(见表)将其pH调到8.4。加0.1到1.0μg的DNA样品到PCR反应体系中并执行标准的PCR反应。
限制性核酸内切酶酶切反应:
用HEPES(见表)将DNA溶液的pH值调到酶切所要求的范围。作为另一可选方案,也可以用pH值为7�8的1 mM EDTA透析DNA样品。每ug的DNA加3-5单位的酶。酶切条件按照酶制造商的说明进行,反应时间为3�24小时。在标准的测定中,80�90%的DNA是可被消化的。
溶于8 mM NaOH中DNA样品pH值的调整:
(每1 ml 的8 mM NaOH使用以下数量的0.1 M 或1 M HEPES,游离酸。)
DNA抽提注意事项:
1.苯酚层和中间层可以在2�8℃下放置过夜。
2.溶于75%酒精中的DNA可以在2�8℃下放置数月。
3.溶于8 mM NaOH中的DNA可以在2�8℃下放置过夜,若要长期保存,将其pH值调整到7�8,并调整EDTA的浓度到1 mM。
疑难解答:
DNA抽提
•每mg组织或1×106培养细胞预期的DNA产量
1.肝和肾,3�4μg
2.骨骼肌,脑组织,和胎盘,2�3μg
3.培养的人,大鼠,小鼠细胞(1×106),5�7μg
4.纤维母细胞,5�7μg
•产量低
1.样品匀浆化或裂解不完全。
2.终DNA不完全再溶解。
•A260/280比值<1.70
1.在分光光度计测量前用水而不是用TE缓冲液稀释DNA样品。
2.DNA样品中的苯酚没有完全去除。用0.1 M的柠檬酸钠(用10%酒精配制)再洗涤DNA沉淀一次。
•DNA降解
1.从动物身上取下的组织没有立即处理或冰冻。
2.用于抽提的样品,或已经抽提的RNA样品存放于-5�-20℃,而没有存放于-60�-70℃。
3.使用了Polytron或其他高速的匀浆器匀浆样品。
•RNA污染
1.水样层没有完全去除。
2.用0.1 M的柠檬酸钠(用10%酒精配制)洗涤DNA沉淀不完全。
•其他的应用方面
在行PCR扩增前调整pH值到8.4。
对用于限制性核酸内切酶消化的DNA,调整其pH值到所需的范围,每μg的DNA加3�5单位的酶,对某些特殊的酶最佳条件下允许的反应时间在3�24小时内。一般而言,80�90% 的DNA均可以被消化。