溶血反应的检测试剂
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(一)补体
检测血清补体水平或补体活性时需要从受检者采血及分离血清。做补体结合试验时多采用豚鼠血清作为实验用补体的来源。因为补体在体外极易衰变,所以检测补体活性的血清标本和作为补体试剂的血清必须新鲜。
受检者一般做静脉采血,在动物可做心脏采血。血清分离后应及时使用,最好在当日用完。必须保存时采用小量分装的办法,置-70℃下可保存数月,避免反复冻融。冻干制品可长期保存,但其活性都不同程度地比新鲜血清降低。
以豚鼠血清作补体来源时,应考虑到个体差异。为了确保血清中补体的有效活性,必须取3只以上豚鼠的血清混合后使用。
(二)绵羊红细胞
从绵羊颈静脉无菌采血,抽出血液后立即小心地注入放有玻璃珠的无菌干燥三角烧瓶中,充分旋摇15~20min,以除去纤维蛋白。也可将羊血与等量或2倍量的Alsever血液保存液混合,既有抗凝作用,又适于储存;分装后置4℃,可使用3周。
实验前,取适量抗凝血,加入8~10倍的生理盐水,轻轻混匀后2000r/min离心5min;弃上清,沉淀的红细胞用生理盐水再洗一次,这时上清为无色澄清,如显红色说明有溶血现象,应更换新鲜羊血;第三次用缓冲液洗涤,弃上清,取压积红细胞用缓冲液配制SRBC悬液,使用浓度一般为2%~5%.为使红细胞浓度标准化,可吸取少量红细胞悬液,中入20~30倍的稀释液中,在542nm波长比浊,以吸光度为标准调整红细胞浓度。
(三)溶血素
溶血素即抗绵羊红细胞抗体,多是以绵羊红细胞免疫家兔而得到兔抗血清。一般没有必要进一步提纯抗体,但在试验前需先进行加热56℃30min或60℃3min以灭活补体。
由于补体溶血试验及补体结合试验均是比较精密的试验,其结果与溶血素的效价有关,所以试验需要滴定溶血素效价;在制备抗血清的过程中,于动物采血前和分离抗血清后也需要滴定溶血素效价。
1.溶血素稀释稀释溶血素时,要先对效价有个大概的估计,以便确定稀释度的范围。动物采血前滴定时稀释范围要稍大些,实验前的滴定便以原先的记录作为参考(溶血素的效价多在数千单位以上)。医学|教育网搜集整理溶血素稀释一般不采用连续倍比稀释法,因为稀释到最后时跨度太大,不容易确定单位。为了便于操作,现举例按表14-1配制不同稀释度的溶血素。
表14-1不同浓度溶血素的配制
最终稀释度 | 缓冲液(ml) | 所加溶血素 | |
稀释度 | 体积(ml) | ||
1:1000 | 1.8 | 1:100 | 0.2 |
1:2000 | 0.2 | 1:1000 | 0.2 |
1:3000 | 0.4 | 1:1000 | 0.2 |
1:4000 | 0.2 | 1:2000 | 0.2 |
1:5000 | 0.8 | 1:1000 | 0.2 |
1:6000 | 0.2 | 1:3000 | 0.2 |
1:8000 | 0.2 | 1:4000 | 0.2 |
1:10000 | 0.2 | 1:5000 | 0.2 |
表14-2溶血素的滴定
管号 | 溶血素稀释度 | 试管内加的各种试剂材料 | 结果 | |||
溶血素(ml) | 1:60稀释补体(ml) | 缓冲液(ml) | 20%羊红细胞(ml) | |||
1 | 1:1000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 全溶 |
2 | 1:2000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 全溶 |
3 | 1:3000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 全溶 |
4 | 1:4000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 全溶 |
5 | 1:5000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 大部分 |
6 | 1:6000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 微溶 |
7 | 1:8000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 不溶 |
8 | 1:10000 | 0.1 | 0.2 | 0.2 | 0.1 | 不溶 |
9 | (对照) | - | - | 0.5 | 0.1 | 不溶 |
按照以上标准,以产生完全溶血的最高稀释管为最大有效反应管,以该管的溶血素稀释倍数为溶血素产效价。例如表14-2中的溶血素效价应为1:4000;在1:4000稀释的情况下,反应液中所含溶血素的的量为1U/ml.
做补体活性测定或补体结合试验时,一般使用2U/ml溶血素(在本例做1:2000稀释),与SRBC悬液等体积混合。
(四)稀释缓冲液
磷酸缓冲液或巴比妥缓冲液等均可用于溶血试验医学|教育网搜集整理,pH值应调至7.2~7.4之间。另加入适量氯化钠以保持等渗,并适当地加入一些钙离子和镁离子,这是补体活化所不可缺少的。有的配方还加入0.1%的明胶以使蛋白溶液稳定;加入0.01%NaN3可以防腐,利于较长时间保存。