人胱抑素C(Cystatin C)ELISA试剂盒 说明书

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人胱抑素C ( Cystatin C )ELISA 试剂盒

( 用于血清、血浆、细胞培养上清液和尿液生物体液内 )

原理

本实验采用双抗体夹心 ABC-ELISA 法。用抗人 Cystatin C 单抗包被于酶标板上，标准品和样品中的 Cystatin C与单抗结合，加入生物素化的抗人 Cystatin C ，形成免疫复合物连接在板上，辣根过氧化物酶标记的 Streptavidin 与生物素结合，加入底物工作液显蓝色，最后加终止液硫酸，在 450nm 处测 OD 值，Cystatin C 浓度与 OD 值成正比，可通过绘制标准曲线求出标本中Cystatin C 浓度。

试剂盒组成 （ 2-8 ℃保存）

酶标 板 （Coated Wells ）	96 孔	酶标抗体工作液（Enzyme Conjugate ）	12ml
10×标本稀释液（ Sample Buffer ）	12ml	20×浓缩洗涤液（ Wash Buffer ）	50ml
标准品 （Standards ） ： 120ng/瓶	2 瓶	底物工作液（TMB Solution ）	12ml
第一抗体工作液（ Biotinylated Antibody ）	12ml	终止液 （Stop Solution ）	12ml

准备试剂与收集血样

1. 收集标本：血清、血浆（EDTA 、柠檬酸盐、肝素抗凝）、细胞培养上清液、组织匀浆、尿液等尽早检测， 2-8 ℃ 保存48 小时；更长时间须冷冻（ -20 ℃或 -70 ℃ ）保存，避免反复冻融。尿液、唾液、支气管液、细胞培养上清1 ： 5 倍稀释。血清、血浆 1 ： 20 倍稀释。

2. 标准品液配制：使用前加入0.3ml 蒸馏水 混匀，配成 400n g/ml 的溶液 。 设标准 管 8 管， 每 管加入标本稀释液 30 0ul 。在第一管中加入 400n g/ml 的标准品溶液 3 00ul 混匀后用加样器吸出 3 00ul ，移至第二 管 。如此反复作对倍稀释，从第七 管 中吸出 3 00ul 弃去。第八 管 为空白对照。

3. 10× 标本稀释液用蒸馏水作 1: 1 0 倍稀释（ 示例： 1ml浓稀释液 +9ml 蒸馏水）。

4. 洗涤液：用重蒸水 1:20 稀释（示例：1ml 浓缩洗涤液加入 19ml 的重蒸水）

检测程序

1. 加样：每孔各加入标准品或待测样品 100ul ，将反应板充分混匀后置 37 ℃ 120 分钟。

2. 洗板：用洗涤液将反应板充分洗涤 4-6 次，向滤纸上印干。

3. 每孔中加入第一抗体工作液10 0ul 。将反应板充分混匀后置 37 ℃ 6 0 分钟。

4. 洗板：同前。

5. 每孔加酶标抗体工作液100ul 。将反应板置 37 ℃ 3 0 分钟。

6. 洗板：同前。

7. 每孔加入底物工作液100ul ，置 37 ℃ 暗处反应15 分钟。

8. 每孔加入100ul 终止液混匀。

9. 30分钟内用酶标仪在 45 0 nm 处测 吸光值。

结果计算与判断

1. 所有 OD 值都应减除空白值后再行计算。

2. 以标准品200 、 100 、 50 、 25 、 12.5 、 6.25 、 3.12 、 0 ng /ml 为横坐标， OD 值为纵坐标，在坐标纸上作图，画出标准曲线。

3. 根据样品 OD 值在该曲线图上查出相应 Cystatin C 含量 ，再乘上稀释倍数即可 。

试剂盒性能

1. 灵敏度 ： 最小的Cystatin C 检测浓度小于 1.5n g/ml。

2. 特异性： 可同时检测重组或天然的人 Cystatin C 。 不与 人其它细胞因子有交叉反应。

3. 重复性：板内、板见变异系数均小于10.6％。

注意事项

1. 以上标准孔及待 测 样品均建议做复孔，每次测定应同时 做 标准曲线。

2. 洗涤过程 很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及 OD 值错误地升高。

3. 板条开封后剩余板条要再封好，保持 板条干燥 。

4. 本试剂盒宜置 4 o C冰箱保存。

5. 本试剂盒仅用于科研，不能用于临床诊断！