甲醛变性电泳
互联网
7844
一、实验原理
提取样品的总RNA后,一般根据RNA的凝胶电泳图来判断RNA的质量。由于RNA容易形成二级结构,因此常用甲醛变性胶来进行RNA电泳,得到的电泳图能真实反映RNA的质量状况。将RNA通过凝胶电泳使之在凝胶中分离出来,通过加入标准核酸分子(markers)对其进行鉴定,并用于转膜、杂交等。
二、实验试剂
1. DEPC 水的处理:用量筒量取去离子水2 L,在通风橱中,加入2 ml DEPC到2L去离子水中,终浓度为0.1%的DEPC。迅速盖上盖子,混匀,然后放在摇床中中速摇荡至少4 h,再高压灭菌。灭菌时将瓶盖松开,15磅灭菌20 min。
2. 10×MOPS缓冲液(即10×FA缓冲液): 500 ml
0.2 mol/L MOPS(3-〔N-吗啉〕丙磺酸)
80 mmol/L NaAc
10 mmol/L EDTANa2
先用400 ml DEPC水溶解20.6g MOPS和4.1 gNaAc后,加入10 ml 0.5 mol/L EDTA,定容500 ml。用0.22 mm滤器过滤除菌,装入棕色瓶中,室温避光保存。
或0.2 mol/L MOPS(3-〔N-吗啉〕丙磺酸)
50 mmol/L NaAc
10 mmol/L EDTA
用2 mol/L氢氧化钠调节pH至7.0,临用时用DEPC水稀释。
3. 1×MOPS电泳缓冲液(即1×甲醛变性胶电泳缓冲液1×running buffer):1 00 ml
10×MOPS 150 ml
37%甲醛 80 ml
加水至1 500 ml,一般在3次电泳结束后需更换此电泳缓冲液。
4. 5 × 甲醛变性胶加样缓冲液(5×loading buffer): 10 ml
预先配制水饱和的溴酚蓝溶液:在1.5ml 离心管中加入约0.1 mg溴酚蓝,加入1 ml DEPC水溶解,充分振荡溶解,离心,可见离心管底部有溴酚蓝粉末剩余,上层液体即水饱和的溴酚蓝液。在15ml灭菌离心管中,依次加入以下各种成分:
4.0 ml 10 × FA buffer
3.1 ml 甲酰胺
2.0 ml 100%的甘油
720 ul 37%的甲醛
80 ul 0.5 MEDTA (pH 8.0)
16 ul 水饱和的溴酚蓝
100 ul DEPC水
混匀,分装,-20℃保存,常用放4℃保存。
或 甲醛凝胶变性RNA电泳加样缓冲液(10×): 10
50%甘油
1 mmol/L EDTA
0.25% 溴酚蓝
0.25% 二甲苯氰
5 ml甘油、20 ul 0.5 mol/L EDTA、25 mg溴酚蓝、25 mg二甲苯氰,加DEPC水至10 ml,高压后,4°C保存。
三、实验设备
1. 电泳设备
2. 紫外灯
四、实验步骤
1. 电泳槽用0.3%H2O2浸泡30 min,DEPC水冲洗晾干。
2. 铺胶(40 ml)
琼脂糖 0.55 g
DEPC水 36 ml
10×MOPS 5 ml
37%甲醛 9 ml
称0.55克琼脂糖加36 ml DEPC水,微波炉加热溶解琼脂糖,肉眼观察无颗粒状悬浮物。冷却至50-60℃,加9 ml 甲醛(37%)和5 ml 10×电泳缓冲液,然后灌制凝胶,插入合适长度和宽度的梳子,于室温放置30分钟以上使凝胶凝固。
3. RNA样品处理(以一条泳道为例)一般取0.3 g的总RNA,加入1/5体积的5×加样缓冲液,65℃加热5 min,冰上骤冷,以消除RNA的二级结构。建议上样前在RNA样品中加入0.5-1.0 ul的溴化乙锭(EB,浓度1.0 mg/mL),而不在胶中加EB,这样电泳后的背景较低。配好的甲醛变性胶先在1×甲醛变性胶电泳缓冲液中预电泳15 min。RNA样品在5-10 V/cm的电压降下电泳30 min。
4. 加2.0 ml甲醛凝胶加样缓冲液(10×)
5. 加样和电泳
将凝胶预电泳15 min,电压降为5-10 v/cm。随后加样品和标准物,以3-4 v/cm电压降电泳,电泳液为1×MOPS电泳缓冲液。直至溴酚蓝迁移至胶下游的3/4处。
6. 电泳结束后,在紫外灯下,仔细测量28S rRNA和18S rRNA至加样孔的距离,并同荧光尺一起拍照,以记录标准物的位置。
五、注意事项
1. 每一泳道至多可分析30 mg RNA,通常用10-20 mg总RNA进行Northern杂交,可以检测高丰度mRNA(占mRNA总量的0.1%以上);如待测RNA含量极微,每个泳道加0.5-3.0 mg poly(A) RNA。
2. 标准物28S rRNA≥6333 base;18S rRNA≥2366 base;9S兔b珠蛋白mRNA≥710 base。溴酚蓝在前(≥300 bp),二甲苯氰FF在后(≥4 kb)