细胞爬片的保存和抗原修复问题总结

1. 细胞爬片可以用含叠氮钠PBS液保存，但不知道具体浓度，请告知。

答：加在液体中作为防腐剂的叠氮钠浓度一般为0.04--0.08%。但是我建议对于细胞爬片，还是尽量快的进行处理，以防不必要的问题！

2. 我的细胞爬片经过4%多聚甲醛固定，PBS冲洗后直接就放在了-20度，还能用于免疫组化吗？！

答：应该没有问题，但是还是现作先染好些，以防抗原的丢失

3. mRNA原位杂交经4%多聚甲醛固定,固定液需加DEPC水。其它建议用甲醇固定。－20度保存。

4. 如果是4%多聚甲醛固定，然后放在PBS中保存，在4度冰箱里保存两周没问题。时间再长就没试过了。

5. 丙酮中固定5-10分钟，然后风干，放置4度保存过夜应该是没有问题。不要固定过夜，蛋白质固定过度，会影响抗原的暴露，影响免疫组化结果。如果是胞浆或胞核抗原出现假阴性结果，可考虑应用0.5%的triton-100孵育30分钟，渗透细胞膜。如果玻片没有经过特殊处理，不要用其他抗原修复的方法，会造成掉片，我曾有过这方面的体会。

6. 丙酮固定后，PBS洗涤3次，即可保存至4度冰箱备用。

7. （1）细胞爬片先用TBS洗3次，每次5分钟

（2）4%多聚甲醛固定，室温，20分钟

（3）70%-80%-90%-95%-100%梯度酒精脱水，通风橱内干燥，-80度保存。2周没有问题的，我保存过2个月都有信号，不过还是保存时间短一点的好。

8. 我的心肌细胞爬片用不同浓度的乙醇依次脱水后,就放在室温中,因为是要拍电镜,但是学校电镜坏了,呵呵,所以放了一个月后去拍,还是很好。

9. 细胞爬片用4%多聚甲醛或冷丙酮等固定，用PBS冲洗后，晾干，放在-20度保存一个月没有问题的。

10. 细胞爬片，有机溶剂如4%多聚甲醛或冷丙酮等固定后，轻轻摇动玻片或培养皿等，静置2 min左右，弃去固定液，不用PBS洗而是采用空气干燥，干燥后的标本可于-70℃长期保存。解冻时要小心抗原破坏，应先将标本转移于干冰预冷的固定液，然后再将混合液转移至室温下，固定液到达室温时取出标本，再用PBS冲洗，在做以后的步骤。

11. 我也做过细胞爬片的组化染色，不过没有遇到类似的问题。细胞培养好后用PBS洗一遍，然后4%多聚甲醛4度固定15分钟，自然风干。室温保存几周内都可以用的。我想这可能与抗原的类型有关，有的对氧化等损伤比较敏感，有的差一些。最好避光保存在4度，同时尽量隔绝空气。免疫荧光与普通DAB显色差别只再二抗的标记，样品的保存应该是没有多大差别的。

12. 细胞爬片丙酮固定后-20度保存，现在要再做免疫荧光，将保存的爬片拿出37度复温然后常规操作就可以了。

13. 爬片做免疫组化的优势在于抗原新鲜，细胞形态保存较好。若爬片需长期保存并出现你这样的问题，原因可能是：1）试验步骤有误，建议重复并加阳性对照片。2）加一抗前处理同石蜡切片，可进行抗原修复，如胰酶消化或热修复。3）因为抗原抗体反应在液相中进行，故对已极度干燥的爬片充分水化很重要。建议试验前用PBS浸泡过夜。如不能解决你的问题请QQ联系：81825645。本人在湖南省肿瘤医院病理科（长沙市）做免疫组化。

14. 4%多聚甲醛或冷丙酮固定都可以，也有用无水酒精的，固定好后放-20度，2-3个月是没有问题的。

15. 对于一般的细胞免疫组化，我的做法是：细胞爬片用冰的纯丙酮固定20 min，再在通风柜将丙酮吹干，—-20度保存，用丙酮固定作用是沉淀蛋白质和糖，穿透性很强，保存抗原的免疫活性好。所以丙酮常用做细胞细胞爬片的固定剂。当然还是要根据你的实验目的决定用那种固定剂。

如：1．多聚甲醛(常用4%)：可用于免疫电镜；也可用于免疫荧光染色。 主要检测组织内一些性能娇弱的抗原特别是细胞表面抗原，例如各类淋巴细胸分化决定簇(CD)、主要组织相容性抗原等。

2．乙醇。优点：穿透性强、抗原性保存较好。缺点：但醇类对低分子蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质保存效果较差，使蛋白变性的作用轻，固定后可再溶解；染色过程中，温育时间长，抗原可流失而减弱反应强度。

3．甲醛(福尔马林)应用最广 优点：形态结构保存好，且穿透性强， 缺点： 甲醛放置过久可氧化为甲酸，使溶液pH降低，影响染色； 分子间交联形成的网格结构可能部分或完全掩盖某些抗原决定簇，使之不能充分暴露。可造成假阴性的染色结果。

16. 4度是不能保存这么长时间（1个月）的，如果抗原已被分解，再修复也没用！

17. 弃去固定液，不用PBS洗而是采用空气干燥，干燥后的标本可于-70℃长期保存。

18. 爬片置于37度PBS中洗三次，每次3到5秒钟，然后在4%多聚甲醛中固定15分钟，然后再用37度去离子水将甲醛冲干净，注意手法轻柔，要不然掉片很厉害。同时操作过程中注意玻片的正反面，要不然真的是前功尽弃。

将做好的爬片置于滤纸上晾干，然后用中性树胶粘在载玻片上。注意一定要等中性树胶彻底干了之后才能做后续实验，要不然玻片会掉下来的，就又是前功尽弃了 做好的细胞爬片可以放在-20保存备用，具体能保存多长时间不太清楚，当然尽量早用。

19. 固定后放点PBS，然后放在4度冰箱中保存，我最长保存两个月的，然后再做免疫组化，应该没有太大的问题的。

20. 固定后4度可以存放一周，-20度存放半年，我现在也要做这个，实验室老师教的。

21. 四度放1周应该没问题的，你最好放在-20度，我在-20度放一个月都还出结果的．很多人作的片子很多，不可能一次作完，一个月没问题。

22. 最佳的固定及保存方法：

（1）中性缓冲福尔马林（不必调pH）：

福尔马林（40%甲醛，用时加入过量碱式MgCO3中和） 10.0 ml

Na2HPO4.12H2O 1.9653 g

NaH2PO4.2H2O 0.5460 g

加0.85 %NaCl溶液溶解，定容至100 ml。

（2）细胞固定：待细胞接近长成单层时，用镊子取出盖玻片，迅速于37℃PBS中漂洗2次，每次3-5秒，以清除血清。

（3）将盖玻片投入中性缓冲福尔马林溶液中室温固定30 min。

（4）用镊子取出盖玻片，PBS漂洗2次，每次3-5秒，晾干保存于-20℃备用。可长期保存，做实验时，取出片子，入PBS湿润后即可进行你的实验。

可以用于做免疫细胞化学（H.E.)或免疫荧光。

23. 细胞爬片固定以后要放在-20度的冰箱，1个月内可以用。

24. 过氧化氢处理这一步，用三蒸水稀释商品浓度为30%的过氧化氢，然后室温下玻片放在其中浸泡10 min，是不是过氧化氢导致细胞严重脱片？

爬片应该用甲醇/双氧水，你的细胞极可能是过氧化氢导致严重脱片。

25. 本人比较喜欢用4%得多聚甲醛，20分钟很好用的。保存的时候注意片子最好晾干，不要挤压，防止粘片和碎裂。

26. 细胞爬片固定好以后，如果要保存，我们的做法是倒掉固定液，PBS漂洗后干片保存在4度，最长半年没问题。

27. （1）用新鲜配制的预冷的4%多聚甲醛缓冲液室温固定15 min，PBS (0.01 mol/l，pH7.4)洗涤3遍后是否就可以进行免疫细胞化学染色了？

（2）爬片PBS (0.01 mol/l，pH7.4)洗涤3遍后是否能保存，怎样保存？

答：（1）洗过就可以做免疫组化了。

（2）固定过后自然干燥，不要洗，-20度保存。做之前再洗。

28. 细胞固定最好用丙酮或酒精，不要用4%多聚甲醛，以免抗原交联，这样组化时不用再抗原修复。细胞固定后可室温保存在丙酮中，不使之干燥。

29. 如果是检测膜上的物质,好象不能用酒精。

30. 适当密度后取出固定(丙酮-20固定10～20 min)，再进行免疫染色。

31. 一批细胞爬片，如果细胞爬片是在玻璃上，冷丙酮固定15-20分钟，然后放-20度，没有问题。如果细胞爬片是在24孔板或6孔板里进行，冷丙酮会腐蚀板子，最好4%多聚甲醛。

32. 细胞爬片用纯丙酮固定10分钟，取出干燥后用锡纸包裹，-70度保存。

33. 4%多聚甲醛固定后PBS水洗，自然干燥后用锡纸包裹，-20度冻存不超过1月。

34. 如果细胞贴壁困难，可将片子先用纯血清挂一层，凉干后再养细胞。

35. 可以买NUNC公司的专用细胞培养用盖玻片，商品名Thermanox Coverslips。高分子材料，耐高温灭菌，经过特殊表面处理，细胞容易贴附。可以用剪刀任意裁剪，使用效果好。

上海生工有现货，不用国外定货。我使用后，觉得效果比玻璃盖玻片效果好很多。

36. 我们通常是把细胞玻片固定好后，用PBS冲洗干净，然后用酒精脱水（80%，90%，100%，100%酒精各一次，每次10分钟左右），然后放在烘箱里烘干，这是就相当于石蜡切片了，可以保存一定的时间。

这个方法我们试过的，保持一段时间后做，效果还是可以的。