小鼠与大鼠采血法解析

（1）采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在 25-28 ℃，冬季，15-20℃ 为宜；

（2）采血用具有采用部位一般需要进行消毒；

（3）采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；

（4）若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂。现将采用血方法按动物和部位分别加以介绍。

二、小鼠、大鼠采血法

（1）割（剪）尾采血

当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在 45℃ 左右的温水中数 min，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖 0.3-0.5 cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。

也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血 10 余次以上。小鼠每次可取血 0.1 mL，大鼠 0.3-0.5 mL。

（2）鼠尾刺血法

大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用 7 号或 8 号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集 10-50 mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

（3）眼眶静脉丛采血

采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部（大鼠采血需带上纱手套），应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。

右手持续接7号针头的 1 mL 注射器或长颈（3-4c m）硬质玻璃滴管（毛细管内径 0.5-1.0 mm），使采血器与鼠面成 45℃ 的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转 180 度使斜面对着眼眶后界。

刺入浓度，小鼠约 2-3 mm，大鼠约 4-5 mm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约 0.1-0.5 mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。

若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重 20-25 g 的小鼠每次可采血 0.2-0.3 mL；体重 200-300 g 大鼠每次可采血 0.5-1.0 mL，可适用于某些生物化学项目的检验。

（4）断头取血

采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大（小）鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约 1/2-4/5 的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约 0.8-1.2 mL;大鼠约 5-10 mL。

（5）心脏采血

鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约 0.5-0.6 mL；大鼠约 0.8-1.2 mL。

（6）颈动静脉采血

先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。

（7）腹主动脉采血

最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉，使血液喷入盛器。

（8）股动（静）脉采血