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基于钙调素与荧光蛋白融合的钙指示剂

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1. 介绍

Ca2+ 浓度([ Ca2+ ] ) 变化涉及细胞过程,如细胞发育、分化和凋亡,在它们存在的时空环境中研究这些变化,可以深入地了解它们的生物学意义。合成染料( 如 Fura 和 Indo) 和发光蛋白(aequorin) 是研究 [Ca2+] 变化的常用工具,但是,多数合成染料迅速从细胞中流失,发光蛋白只有微弱的生物光且不能按比例显示[Ca2+] 的变化[ 1 ] 。相反,蛋白质 Ca2+ 传感器基于 Ca2+- 钙调素复合物和绿色荧光蛋白(起先被命名为钙变色子)克服了原先的这两个限制 ( 见注 1 )。本章我们描述包括钙变色子克隆、生化特性的鉴定和用数字荧光显微镜在单个细胞中成像的有关方法。在我们能够描述这些方法之前,必须理解荧光共振能量转移理论( FRET ; 见 4.1.1 ) 和对钙变色子的一般设计(见 4.1.2)。

1.1 FRET ( 荧光共振能量转移)的概念

FRET 是能量从给体荧光团到受体荧光团的转移。如果给体的发射谱与受体的激发谱严重重叠,这种转移就能够发生。这种能量转移在距离小于 80 A 时发生,并当两个荧光团靠得最近且取向平行时效率最高 [2,3] 。在设计钙变色子时,用 GFP 突变体作为两个伙伴荧光团:蓝绿色荧光蛋白作为给体,而黄色荧光蛋白作为受体(见图4.1 ; 参考文献 [4])。如果两个荧光团融合于不同的作用伙伴,分子间 FRET 可以用来探测蛋白质-蛋白质相互作用,而如果两个荧光团都融合到同一个蛋白质,分子内 FRET 可用来探测蛋白质剪切和构象变化 [3] 。



4.1.2 钙变色子的一般设计

使用分子内 FRET 的概念,钙变色子由夹在 CFP 和 YFP 之间的,前后融合的 CaM 的 N 端和 C 端结构域(分别记为 N-CaM 和 C-CaM ) 以及 CaM 识别序列(CRS) 组成 [5~7] 。CRS 的位置取决于它的结合取向,它或者放在 CaM 的 N 端、CaM 的 C 端,或者放在 N-CaM 和 C-CaM 之间 [ 见图 4.2  ( A ) 和注 2] 。在 Ca2+ 流入之后,CaM 结合到 CRS 上,引起构象变化,拉近 CFP 和 YFP,以增加 FRET 效率(见图4.2B)。已用 CFP-YFP 作 FRET 伙伴,制造出数种黄色的钙变色子(YC ) ,它们具有不同的 Ca2+ 亲和力、亚细胞定位和动态范围。本章提供的方法适用于所有已发表的用于 Ca2+ 成像的 YC,包括 YC2.1,它基于 CaM 结合到肌球蛋白轻链激酶 CRS 肽上的结构 ( MLCKp;参考文献 [7]);YC3.1,CaM 的单点突变 E104Q 降低了 Ca2+ 亲和力 [7]; YC2nu,以核为目标;YC6.1,基于改善了动态范围的,CaM 结合于 CaM 依赖激酶的激酶 CRS 肽(CKKp) 的结构。


2. 材料

2.1 钙变色子的克隆

( 1 ) PRSETB 细菌表达质粒(Invitrogen ) : 用于 Ni-次氮基三乙酸(NTA ) 琼脂糖蛋白纯化的 His-tag;用于选择的氨苄青霉素和用于诱导蛋白质表达的异丙基-β-D-硫代半乳糖吡喃糖苷(IPTG )。

( 2 ) pcDNA3 哺乳动物瞬时表达质粒(Invitrogen ) : 巨细胞病毒启动子和用于细菌选择的氨苄青霉素抗性基因。

2.2 生物化学和生物物理鉴定

( 1 ) Luria-Bertani  ( LB ) 培养基:10 g 胰蛋白胨,5 g 酵母提取液和 5 g 氯化钠;加入水至终体积 1 L。

( 2 ) IPTG。

( 3 ) 苯甲基横酰基氟化物。

( 4 ) Ni-NTA 琼脂糖(Qiagen)。

( 5 ) 大肠杆菌菌株 BL21 ( DE3 )。

( 6 ) 超声发生器。

( 7 ) EGTA 缓冲液:100 mmol/L 氯化钾,50 mmol/L pH 7.4 的 HEPES 和 10 mmol/L EGTA。

( 8 ) 氯化钙缓冲液:100 mmol/L 氯化钾,50 mmol/L pH 7.4 的 HEPES,10 mmol/L EGTA;和 10 mmol/L 氯化钙。

( 9 ) 荧光光谱仪(Shimadzu)。

2.3 钙变色子的成像

( 1 ) 含 10% 胎牛血清(FBS) 的 Dulbecco 的修饰 Eagle 培养液(DMEM )。

( 2 ) 含 Ca2+ 的 Hank's 平衡盐溶液(Gibco)。

( 3 ) 37°C 二氧化碳培养箱。

( 4 ) HeLa 细胞株。

( 5 ) Genejuice (Novagen)。

( 6 ) 奥林巴斯 IX70 倒置表面荧光显微镜。

( 7 ) 奥林巴斯氙灯。

( 8 ) MicroMax 1300YHS 电荷耦合器件(CCD) 照相机和 Metafluor 4.5r2 软件控制的 Sutter  Lambda  10-2 滤镜转换器。

( 9 ) CFP- YFPFRET 滤镜组(Omega Optical ; 见注 3 ): 440AF21 激发滤镜(CFP 激发),455DRLP 二色镜,480AF30 发射滤镜(CFP 发射)和 535AF26 发射滤镜 ( YFP 发射)。

( 10 ) 中性密度滤镜(ND) 组(Omega Optical)。  .

( 11 ) UApo X 40 油  Iris/340 物镜(奥林巴斯)。

( 12 ) U-MNIBA 带通直角镜单元(奥林巴斯)。

( 13 ) 组胺,离子霉素,EGTA 和 BAPTA-AM (Sigma)。

( 14 ) 35 mm 直径玻璃底皿(Maltek)。

4. 注

1. 钙变色子不是没有它们自身的局限。通常,它们比提到的其他方法有较低的信噪比。但是,正如文中所述,信噪比可通过仔细设计新的建构 [5 ] 或通过优化实验条件来改善。

2. 插入 CRS 的最好的地方,依赖于三维结构中,两个 CaM 结构域相对于 CRS 的排布。如果在 CaM-CRS 复合物中,CRS 的 N 端在 CaM 的 C 端的 20A 之内,CaMCRS 融合就是有效的 [6] 。但是,如果 N 端和 C 端都在 CaM 铰链的 10A 之内,(NCaM)  -CRS- ( C-CaM) 融合会是最有效的。

3. 如果在自己的应用中只对使用 CFP 和 YFP 感兴趣,CFP-YFP  FRET 滤光组合会满足你的需求。如果你想在FRET 中使用 Discosom 红色荧光蛋白 CdsRed;参考文献 [ 12 ] 和 [13]),需要下列来自 Omega Optical 的或类似的双色镜和滤光镜:双色镜 450-520-590 TBDR 用于二色镜;440DF21 用于 CFP 激发;510DF23 用于 YFP激发;575DF26 用于 dsRed 激发。480AF30 用于 CFP 发射;535AF 26 用于 YFP 发射;600ALP 用于 dsRed发射。这一滤镜组允许你激发和接收单独来自 CFP、YFP 和 dsRed 的光,但效率会有降低。

4. 在钙变色子的建构中,我们切除了 CFP 的 C 端 11 个氨基酸(形成 GFP 极小域),以减少荧光团的相对翻滚。甚至,把氨基乙酸-甘氨酸连接引入 CaM 和 CRS 融合蛋白中,以增加 Ca2+ CaM-CRS 复合物的构象自由度。

5. 在为插入 PRSETB 或 pcDNA3 而用聚合酶链反应扩增钙变色子 DNA 时,记住钙变色子的 5' 和 3' 引物会有内引物位点,因为,CFP 和 YFP 只有几个点突变的差别。需从琼脂糖胶上纯化大小正确的 DNA 片段。

6. 如果你的实验中钙变色子降解或在细菌细胞中不溶,可以用哺乳细胞降解物完成鉴定。为收获产物,细胞应生长在直径为 10 cm 的培养皿中。转染 24 h 后,把细胞刮出培养皿并在低渗的破解缓冲液(50 mmol/L HEPES,pH 7.4 和 100 mmol/L 氯化钾;5 mmol/L 氯化镁和 0.5% Triton X-100 ) 中破碎。然后离心混合物以去除碎片。下一步,在 2 L 缓冲液(50 mmol/L HEPES,pH 7.4 和 100 mmol/L 氯化钾)中透析上清液。最后,样品可用于鉴定,如 4.3.2.2 和 4.3.2.3 节所述。

7. Ca2+ 结合曲线的精度取决于 Ca2+/EGTA 缓冲液的精确配制 [9]。

8. 由于光漂白作用,实验过程中发射强度会增加;但是,如果 FRET 不变的话,发射强度应保持为常数。为减少光漂白,减少曝光时间和激发光强。以 “ Binning” 方式读取 CCD 照片数据时,会将许多点的数据相加,所以在维持高信噪比的同时,只需较少的光。



参考文献

1.  Takahashi,  A.  ,  Camacho,  P.  ,  Lechleiter,  J.  D.  ,  and  Herman,  B.  ( 1 9 9 9 )  Measurement  of  intracellular  Ca2+.Physiol. Rev. 79 9   1 089-1125 .

2.  Miyawaki,  A. and  Tsien,  R. Y.  (2000)  Monitoring  protein  conformations  and  interactions  by  fluorescence  reso-nance  energy transfer between mutants  of green fluorescent  protein. Methods EnzymoL  327,  472-500.

3.  Truong,  K. and Ikura,  M.  (200 1 )  The use of FRET imaging microscopy to detect protein-protein interactions andprotein  conformational  changes  in vivo .  Curr.  Opin. Struct. Biol,  l i ,  573-578.

4.  Tsien,  R. Y.  (1998)  The green fluorescent protein. Annu. Rev. Biocherru  67,  509-544.

5.  Truong,  K.  ,  Sawano,  A.  ,  Mizuno,  H.  ,  et  al.  (200 1 )  FRET-based  in vivo  Ca2+imaging  by  a  new  calmodulinGFP  fusion molecule. Nat. Struct. Biol.8,  1069-1 073.

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13.  Matz,  M. V.  ,  Fradkov,  A. F.  ,  Labas,  Y. A.  ,  et  al.  ( 1 999)  Fluorescent  proteins  from nonbioluminescent  Anthozoa  species.  Nat. BiotechnoL  1 7,  969-973.
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