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三氯乙酸-丙酮法提取植物全蛋白

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2679
1. 前言

在蛋白质组研究中,双向电泳图谱的比较占有重要地位。双向电泳必须能很好地分离各个蛋白质,应尽量避免拖尾、横纹或因蛋白质降解而产生的假相。蛋白质在图谱上的分布模式必须是可重复的。蛋白质样品的制备是这些条件得以保持的重要前提。植物蛋白提取的难点在于植物细胞中蛋白质的含量低,同时还含有很多干扰蛋白提取的有机物 ,如酚类、色素、脂类及核酸等 [1] 。提取出的蛋白必须溶解在与等电聚焦 (IEF ) 电泳缓冲系统兼容的样品溶液中。

经过在各种植物组织中的试验,我们建立了一种以三氯乙酸和丙酮使蛋白质变性并沉淀的提取方法。本方法起源于 Wu 和 Wang [ 2] 最初关于三氯乙酸沉淀蛋白质能高效抑制蛋白酶活性的报道。提取出来的蛋白质最后溶解在尿素-碳酸钾-SDS (UKS )[ 3] 溶液中。用本方法提取的蛋白质样品在电泳中具有很好的重复性,同时对于高分子质量和髙等电点的蛋白质也有很好的分辨率,因而被广泛使用,且命名为三氯乙酸/丙酮法[ 4, 5 ] 。

UKS 样品缓冲液适合用于最初的自制管胶进行的等电聚焦电泳。这种自制管胶进行等电聚焦时,pH 梯度是在施加电压后由两性电解质移动形成。20 世纪 90 年代开始出现的商品化的 IPG 胶条用于等电聚焦电泳,大大提高了电泳的重复性,因而被广泛使用。

然而,使 用 IPG 胶条进行等电聚焦时,需要施加很高的电压,而 UKS 溶液中的高含盐量和 SDS 使得该缓冲液不适合这种等电聚焦系统 [6],因而必须采用新的样品缓冲液。

本章,我们将着重描述分别为进行传统的等电聚焦和现代的 IPG 等电聚焦电泳制备样品所采用的不同步骤。
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