家兔失血性休克法

家兔失血性休克法是教学中用于研究休克的常见动物模型。

家兔失血性休克法的基本原理是采用对家兔股动脉处快速放血的方法，10 min 内使MAP（平均动脉压）降至5.33kPa（40 mmHg），并维持20 min，此时放血量已经达到20％ 以上，复制失血性休克的动物模型，利用解剖显微镜动态观察肠系膜微循环血流动力学的改变，再采用高晶高胶液进行扩容治疗，观察其对家兔失血性休克的治疗作用。

家兔失血性休克法可用于探讨失血性休克的发病机制、观察高晶高胶液对家兔失血性休克的疗效并探讨其机制。

器材：

兔手术器械1套，兔手术台，BL-420生物信号采集分析系统

压力传感器，水检压计，微循环观察装置（解剖显微镜、灌流盒）

静脉输液装置，储血瓶，动脉导管和静脉导管，动脉夹，温度计

100 mL烧杯，5 mL、10 mL、20 mL注射器，止血纱布，婴儿秤。

试剂：

①3％ 戊巴比妥钠溶液；
②生理盐水；
③微循环灌流液（含1％ 明胶的台氏液）；
④0.3％ 肝素钠生理盐水溶液；
⑤7.5％ 氯化钠与6％ 低分子右旋糖酐混合液（即高晶高胶液）。

家兔失血性休克法的基本过程可分为如下几步：

A. 取家兔一只，称重后静脉注射3％ 戊巴比妥钠溶液（1 mL／kg），进行全身麻醉。

B. 将家兔仰卧固定于兔手术台上，剪去手术区被毛，在甲状软骨下做颈部正中切口（长约4 cm），分离气管，做倒“T”形切口，插入“Y”形气管插管并固定，保证呼吸通畅，并将插管的一侧接呼吸描记装置，描记呼吸；分离一侧颈总动脉，插入动脉导管，经压力传感器（插管前在动脉导管和压力传感器导管部分充盈肝素，以防止凝血后堵塞血压传导通路）与BL-420生物信号采集与分析系统相连，记录MAP、Ps-d、HR。

C. 在左侧股三角区域触及股动脉后，沿动脉行走方向做长约2 cm的切口，游离左股动脉后插入股动脉导管（插管前在动脉导管和储血瓶内加入约20 mL肝素钠溶液，以防止凝血后堵塞放血通道），在其尖端之前用动脉夹股动脉，导管另一端与储血瓶相连，以备放血。

D. 在右侧股三角区沿动脉行走方向做一长约2 cm的切口，游离右股静脉，插入长度约为40 cm股静脉导管至下腔静脉入右心房处（约在剑突上1.5 cm处），插入深度约20 cm，导管外端接三通管，一侧同输液瓶相连后，缓缓输入生理盐水（5～8滴／分）以保持导管及静脉通畅，一侧经压力传感器与BL-420生物信号与分析系统相连，记录CVP。

E. 在剑突下方1.5 cm处向下沿正中线做长约5 cm的腹正中切口，沿腹白线打开腹腔，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻拉出，置于微循环灌流盒内，用解剖显微镜观察肠膜微循环情况。

F. 将温度计插入直肠，测体温。

G. 记录各项指标后，降低储血瓶，松开动脉夹，快速从左股动脉放血，10 min内使MAP降低至5.33 kPa（40 mmHg），并维持20 min（通过改变储血瓶高度来调节血压），记录各项指标及储血瓶内血量。

H. 停止放血，从右侧股静脉导管输入高晶高胶液4 mL／kg（生理盐水治疗组则输入生理盐水4 mL／kg），5 min 注完，记录治疗后5、15、30、60 min时的各项指标。

（1）麻醉深浅要适度，过深可严重抑制呼吸；过浅则动物疼痛挣扎，影响观察，甚至引起神经源性休克。
（2）牵拉肠袢动作要轻柔，以免引起严重低血压，影响休克实验。
（3）尽量减少手术出血，分离血管时，应钝性分离，切勿使用手术刀或手术剪；出血时应设法止血。
（4）所有动、静脉导管及压力传感器内均应充盈肝素生理盐水，并排尽气泡。
（5）压力传感器高度均应与心脏水平一致。
（6）观察微循环时，分清动脉、静脉及毛细血管，选好标志血管，固定视野，以保持前后观察结果一致。