家兔失血性休克抢救不当致肺水肿的实验观察

【实验目的】

1． 复制家免失血性休克与实验性肺水肿。

2． 观察失血性休克时动物的一般表现。

3． 了解失血性休克发病机制及各种急救治疗的不同效果。

4． 观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机制。

【实验对象】

家兔。

【实验试剂与器材】

1． 器材　手术器械、气管插管和与之配套的呼吸描计装置（二道生理记录仪或计算机生物信息处理系统）。静脉导管和静脉输液装置，测中心静脉压装置、输尿管插管，微循环观察装置，温度计、1ml、2ml、20ml、50m1注射器。兔称、天平、听诊器、家兔固定台（兔台）、丝线、纱布、滤纸、烧杯等。

2．试剂和药品　0.01％肾上腺素、25％乌拉坦溶液或3％戊巴比妥钠、0.2％肝素生理盐水、去甲肾上腺素注射液、生理盐水。

【实验方法与步骤】

1． 取成年家兔一只，称重，从耳缘静脉注射3％戊巴比妥钠30mg/kg或从耳缘静脉注射25%乌拉坦1g/kg麻醉，仰卧固定。

2． 插入气管插管和动脉导管，观察呼吸和血压：颈部剪毛，沿甲状软骨下正中切开皮肤6cm，分离气管、左侧颈总动脉和右侧颈外动脉。

①插入气管插管，描记呼吸。

②插入颈动脉导管（连三通管），一侧记录血压，另一侧连上预先含有肝素生理盐水的50ml注射器。并暂时夹闭导管，以备放血用。

3． 插入静脉导管进行输液：从右侧颈外静脉插入5cm长的静脉导管，导管的外端用三通管连上输液装置和检压计，用来输液和测定中心静脉压，在测压前，阻断检压计侧管，使导管与输液瓶相通，缓慢输入生理盐水（5～10滴/min），保持静脉通畅。

4． 插入导尿管，观察尿量：在耻骨联合上剪毛，作下腹部正中切口，长5cm。找出膀胱，排空尿液后，将膀胱从腹腔拉出，在背面膀胱三角区找出双侧输尿管入口，分离双侧输尿管，插入输尿管导管，记录每分钟尿滴数。

5. 微循环标本的制备：右腹部剪毛，在右腹直肌旁作6cm长的纵行中腹部切口，钝性分离肌肉，打开腹腔，找出一段游离度较大的小肠袢，轻轻从腹腔拉出，放置在微循环恒温灌流盒内，用38℃台氏液恒温灌流。在显微镜（或显微摄像监视系统）下观察肠系膜微循环变化。

6． 放血前观察动物各项指标以作对照。

7． 放血，引起休克：打开颈总动脉插管与注射器相连的侧管，使血液从颈总动脉流入注射器内，一直放血到5.33kPa(40mmHg)时，调节注射器内放出的血量，使血压稳定在该水平。

8． 观察各项指标改变：维持血压在5.33kPa，20min，观察注射器中血量的增减、失血期间动物各项指标改变。如果时间允许则可继续延长时间进行观察。

9． 用听诊器听肺的呼吸音。

10． 进行休克抢救，输入生理盐水和肾上腺素，引起肺水肿：输入放出的血液，再输入37℃生理盐水。

使血压回升正常后，输入量再按80ml/kg体重计算，输液速度150～180滴／min，输完后将肾上腺素按0.5mg/kg体重计算，用生理盐水稀释10倍后加入输液瓶中，继续滴注。肾上腺素输完后可酌加少量生理盐水，以10～15滴／min速度维持通道，以备必要时第２次用药。

输药液过程中应密切观察下列情况：

①呼吸曲线有否变化，有否急促，困难。

②肺部是否出现啰音，属何性质。

③气管插管口有否粉红色液体溢出。如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素，用法及剂量同上，直至出现明显的肺水肿表现。

11． 取出肺脏，计算肺系数：动物发生肺水肿后即可夹住气管，剪开胸前壁在气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢漏。在结扎处上方剪断气管，然后分离心脏及气管，将肺取出。用滤纸吸干肺表面的水分后，准确称取肺重量以计算肺系数。

正常肺系数约为4～5。

12． 观察肺大体改变：切开肺，注意切面的变化，有否液体溢出（注意其量、性质、颜色）。还可在显微镜下对比观察肺水肿和正常肺的组织切片。

【观察项目】

皮肤粘膜颜色、肛温、动脉血压、中心静脉压(必要时)、呼吸、心率、尿量、肠系膜微循环；肺部啰音、气管流出物、肺系数、肺大体改变。

【注意事项】

1． 忌用实验前已有明显肺部异常征象（啰音、喘息、气促等）的动物，否则影响结果的可靠性。

2． 本实验手术多，要减少手术性出血和休克。可在同一实验室不同组之间适当分工以减少手术创伤。

3． 麻醉深浅要适度，牵拉肠袢要轻。

4． 各导管和注射器要肝素化并注意各导管畅通，随时缓慢推注，以防凝血。

5． 剖取肺脏时，操作要小心，防止肺表面损伤引起水肿液外流，影响肺系数的准确性。

6． 在第一次使用肾上腺素后肺水肿征象不明显者，可重复使用，两次输药要间隔10～15min，不宜过频。

7． 应控制输液速度，不要太快，以150～180滴/min为宜。

　思 考 题

1． 失血性休克有哪些临床表现？

2． 失血性休克的抢救原则？

3． 失血性休克抢救不当时为何会引起肺水肿？